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10.1: Laboratorio de invertebrados I - Biología

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Objetivos de aprendizaje

  • Indique los filos de los organismos discutidos en las actividades de laboratorio.
  • Utilizar las características de simetría, celoma, capas de tejido embrionario y patrones de desarrollo para diferenciar entre los diferentes grupos de invertebrados.
  • Reconocer e identificar las muestras de esponja vistas en el laboratorio.
  • Explica el propósito de las diferentes células de esponja.
  • Reconocer e identificar las muestras de cnidaria vistas en el laboratorio y si las muestras tienen forma de pólipo o medusa
  • Reconocer e identificar los ejemplos de nematodos vistos en el laboratorio.
  • Reconocer e identificar los ejemplos de artrópodos vistos en el laboratorio.

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Esponjas

Procedimiento

Accede a la página "Lectura: Esponjas".

Preguntas

  1. Las muestras de esponja conservadas estarán en exhibición, pero pueden diferir de las que se mencionan directamente en el folleto del laboratorio. Por favor, haga observaciones sobre las muestras disponibles y complete el cuadro a continuación.
    Nombre de la muestraDescripción físicaEstructuras de esponja visibles (osculum, otras esporas, espículas)
    1. ¿Qué tipo de simetría se muestra en las muestras de esponja?
  2. Ver el Grantia diapositivas. No habrá diapositivas disponibles de las espículas, pero vea las imágenes en los materiales de laboratorio.
    1. ¿Cuál es la función de las espículas?
    2. ¿Las esponjas contienen tejidos verdaderos?
    3. ¿Puedes encontrar alguna celda del collar en la diapositiva?
    4. ¿Cuál es la función de las células del collar?
    5. ¿Puede encontrar células epidérmicas en el portaobjetos de esponja?
    6. ¿Cuál es la función de las células epidérmicas?

Cnidarios

Procedimiento

  1. Accede a la página: "Lectura: Cnidarios".
  2. Ver los especímenes de hidra (en vivo y diapositivas).
  3. Mira estos videos:

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Preguntas

  1. ¿Ilustra la hidra el pólipo o la etapa de medusa?
  2. ¿Cuántas capas germinales contiene la hidra?
  3. ¿Qué tipo de simetría se ve en la hidra?
  4. ¿Puedes encontrar los tentáculos de hidra? ¿Cuántos tentáculos contiene tu espécimen de hidra?
  5. Nombra las células urticantes presentes en los tentáculos que son exclusivas de los cnidarios.
  6. Explique el movimiento de la hidra si hay especímenes vivos disponibles. Si no es así, revise el video sobre el movimiento de la hidra.
  7. Si hay muestras de hidra vivas, no agregue el vinagre como se indica en el sitio web del laboratorio. El vinagre hace que expulsen los cnidocitos. Revise el video de nematocistos, que muestra una medusa descargando las células de nematocistos.
  8. Ver los especímenes cnidarios conservados estarán en exhibición. Pueden diferir de los que se mencionan directamente en el sitio web del laboratorio, pero debe haber algunos cnidarios de medusa, así como corales y anémonas de mar. Por favor, haga observaciones sobre las muestras disponibles. Y complete el cuadro a continuación.
    Nombre de la muestraDescripción física¿Pólipo o etapa de Medusa?

Lombrices intestinales (phylum nematoda)

Procedimiento

Acceda a la página "Lectura: Lombrices intestinales"

Mira este video:

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Preguntas

  1. No estaremos diseccionando el Ascaris como se indica en el sitio web. En su lugar, vea la diapositiva preservada.
    1. ¿Qué tipo de simetría se ve en la lombriz intestinal?
    2. ¿Presenta cefalización?
    3. Ascaris es un parásito que nada constantemente en los intestinos humanos. ¿Qué estructura protege al nematodo de ser digerido?
  2. Ver el Trichinelladiapositiva. Trichinella también es un parásito. Puede infectar a los seres humanos y a otros mamíferos como cerdos, osos y roedores. Si no se trata, puede provocar la muerte.
    1. ¿Qué tejido de mamífero infecta este gusano redondo?
    2. Haz un dibujo del Trichinella como se ve bajo el microscopio.
  3. Si hay muestras vivas de anguila vinagre disponibles, véalas. Si no hay especímenes vivos disponibles, revise el video de las anguilas vinagreras.
    1. Describe el movimiento de las anguilas vinagreras.
    2. ¿Tienen un sistema digestivo completo o incompleto?

Artrópodos

Procedimiento

Accede a la página "Lectura: Artrópodos".

Preguntas

  1. Vea los especímenes de artrópodos conservados disponibles. Habrá al menos un ejemplo de cada grupo de linaje discutido en el sitio web, pero es posible que no todos los especímenes estén disponibles. Utilice la siguiente tabla para organizar sus observaciones.
    Nombre de la muestraLinaje¿Exoesqueleto?Apéndices articulados?Segmentos especializados
  2. ¿Qué tipo de simetría se muestra en los artrópodos?
  3. ¿Los artrópodos presentan cefalización?

Disección de cangrejos de río

Procedimiento

Complete la disección del cangrejo de río siguiendo las instrucciones disponibles en el sitio web del laboratorio.

Preguntas

  1. Asegúrese de que puede identificar las siguientes estructuras externas: antena, chile, cefalotórax, abdomen y patas para caminar.
  2. ¿Tiene un cangrejo de río macho o hembra?
  3. ¿Cuántos swimmerets tiene tu cangrejo de río?
  4. ¿Cuántas filas de branquias tiene el cangrejo de río?
  5. ¿Dónde se adhieren las branquias?
  6. ¿Puedes encontrar el estómago y las glándulas digestivas?
  7. ¿A qué se adhiere el estómago directamente?
  8. Intenta localizar las glándulas verdes. ¿Cuál es la función de esta estructura?

Preguntas de revisión

Responda las preguntas de revisión a continuación. Los filos que vimos hoy fueron los poríferos, los cnidarios, los nematodos y los artrópodos.

  1. ¿Qué filos exhibieron simetría bilateral?
  2. ¿Qué filos no tenían tejidos verdaderos?
  3. ¿Qué filos contenía organismos parásitos?
  4. ¿Qué filos eran celomatos?
  5. ¿Qué filos exhibieron cefalización?
  6. ¿Qué phyla que viste hoy contenía apéndices especializados?
  7. ¿Qué filos exhibieron simetría radial?
  8. ¿Qué filos eran pseudocelomatos?
  9. ¿Qué phyla tenía un sistema digestivo completo?
  10. ¿Qué filos eran multicelulares?
  11. ¿Qué filos eran asimétricos?
  12. ¿Qué filos eran acoelomados?

Laboratorio 10: Vertebrados tetrapodos

La clase Amphibia ("doble vida") contiene más de 4.000 especies de animales que son algo de transición entre peces y reptiles. Los anfibios hacen su primera aparición en el registro fósil hace casi 400 millones de años, y las especies supervivientes representan una pequeña fracción del número total de anfibios que alguna vez existieron en la Tierra. Las características generales de los anfibios incluyen un esqueleto óseo y generalmente cuatro extremidades. La piel de los anfibios es húmeda y fina, sin escamas. Dado que es demasiado delgado para brindar mucha protección contra la deshidratación o los depredadores, deben emplear otros medios de defensa.

Por ejemplo, la piel de los anfibios contiene muchas glándulas mucosas que los mantienen húmedos y los vuelven resbaladizos, lo que los ayuda a escapar de los depredadores. La piel de todos los anfibios también contiene glándulas venenosas (serosas) que producen toxinas que van desde levemente nocivas hasta venenosas mortales (algunas se encuentran entre las toxinas más potentes producidas por cualquier vertebrado). De acuerdo con su naturaleza tóxica, muchos anfibios están marcados de manera brillante con colores aposemáticos (advertencia) que anuncian su toxicidad. Estos colores se deben a células que contienen pigmentos, llamadas cromatóforos, que vienen en varias variedades.

Los anfibios vivos incluyen: anfibios sin patas (cecilias), anfibios con cola (salamandras y tritones) y anfibios sin cola, o anuros (ranas y sapos).

Cecilianos

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Las cecilias incluyen alrededor de 165 anfibios sin extremidades que habitan en los bosques tropicales de América Central y del Sur, África y el sudeste asiático. Su alimento consiste principalmente en lombrices de tierra y otros pequeños invertebrados.

Salamandras

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Las salamandras son anfibios de cola con patas cortas y rechonchas. La mayoría de las especies (como la salamandra de espalda roja del este que se muestra) tienen cuerpos delgados, narices cortas, colas largas y cuatro dedos en las patas delanteras y cinco en las traseras. Su piel húmeda los restringe a hábitats húmedos en o cerca del agua, a menudo en humedales. Algunas salamandras son acuáticas durante toda la vida, algunas se sumergen en el agua de forma intermitente y algunas son completamente terrestres cuando son adultas. Único entre los vertebrados es la capacidad de regenerar las extremidades perdidas, así como otras partes del cuerpo. Todas las salamandras y tritones eclosionan con branquias, pero estas generalmente se pierden en todas las formas menos acuáticas o en aquellas que no logran metamorfosearse. Los pulmones son la regla en las formas adultas, pero algunas salamandras carecen de pulmones o branquias, ¡y usan solo la piel y la boca para el intercambio de gases!

Tritones

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Hay poca distinción real entre tritones y salamandras. En América del Norte, los tritones tienden a ser más acuáticos con colas comprimidas lateralmente que ayudan a nadar. Otra diferencia es que los tritones tienden a ser venenosos y algunos de ellos son bastante mortales si se ingieren. En consecuencia, tienden a ser coloridos, activos durante el día y bastante atrevidos (en contraste con la mayoría de las otras especies de salamandras, que son nocturnas).

Ranas

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¡Hay más de 4.000 especies de ranas y sapos, que varían en tamaño desde 1 cm hasta más de 30 cm! Estos anfibios carecen de cola y, por lo tanto, se les llama anuros. Las ranas verdaderas (como la rana de madera que se muestra en la imagen de arriba) tienden a tener dos ojos saltones, patas traseras fuertes, largas y palmeadas que están adaptadas para saltar y nadar, piel suave o viscosa. En general, las ranas tienden a preferir ambientes acuáticos o húmedos y tienden a poner sus huevos en racimos.

Sapos

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Los sapos verdaderos tienden a tener cuerpos rechonchos con patas traseras cortas (para caminar en lugar de brincar), piel seca y verrugosa con glándulas paratoides (venenosas) detrás de los ojos. En general, los sapos prefieren hábitats más secos que las verdaderas ranas y tienden a poner sus huevos en largas cadenas en lugar de grupos. El espécimen que se muestra arriba es el sapo del río Colorado.

Los reptiles hacen su aparición en el registro fósil hace unos 340 millones de años durante la Era Paleozoica. Al comienzo de la Era Mesozoica (hace unos 250 millones de años) los reptiles dominantes se habían irradiado en casi todos los nichos ecológicos concebibles marcando el comienzo de la "Era de los Reptiles". Ciertamente, las formas más espectaculares fueron los dinosaurios ("lagartos terribles") que gobernaron la tierra durante más de 100 millones de años y luego desaparecieron abruptamente hace unos 65 millones de años.

En general, los reptiles modernos muestran una serie de desarrollos que los hacen más adecuados para la vida en tierra que los anfibios. Estos incluyen una piel impermeable, escamas duraderas, un esqueleto más fuerte, sistemas circulatorio, respiratorio y nervioso más eficientes y la capacidad de deshacerse de sus desechos nitrogenados de una manera que requiere la pérdida de muy poca agua. Además, a diferencia de los anfibios que siempre están atados al agua para su reproducción, los reptiles se dedican a la fertilización interna y producen huevos que pueden depositarse en la tierra (algunas especies incluso son capaces de parir crías vivas).

En cuanto a su clasificación, dado que los reptiles no constituyen un grupo monofilético, ya no se consideran un taxón válido separado de las aves. Recuerde que un grupo monofilético debe contener todos los descendientes conocidos de un único antepasado común, pero los reptiles se consideran parafiléticos porque el grupo no contiene todos los descendientes de un antepasado común de reptiles y ¡ndash, el antepasado común de los reptiles es también el antepasado de las aves!

En consecuencia, nos referiremos a los animales tradicionalmente incluidos en la Clase Reptilia como reptiles no aviares. Ejemplos incluyen: tortugas, lagartos, serpientes y cocodrilos.

Tortugas

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Las tortugas y las tortugas marinas se encuentran entre los reptiles no aviares más frecuentes y fáciles de reconocer. Todas las especies están encerradas en un par de conchas óseas, un caparazón dorsal y un plastrón ventral. Las conchas (que están cubiertas con una capa córnea de queratina) se forman a partir de secciones de huesos dérmicos que se fusionan entre sí y con las costillas y las vértebras torácicas. Aunque todas las tortugas (como la tortuga pintada que se muestra en la imagen de arriba) son ovíparas y entierran sus huevos en el suelo, en algunas especies, la temperatura a la que se incuban los huevos determina el sexo de la descendencia (las temperaturas más frías producen machos).

Lagartos

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Las más de 3.000 especies de lagartos pertenecen al grupo más exitoso de reptiles no aviares. Parte de este éxito se debe a sus mandíbulas altamente móviles que pueden usarse para capturar y tragar presas grandes. Aunque se encuentran muchas formas en los trópicos, algunas especies (como el lagarto de la cerca oriental que se muestra arriba) se distribuyen bien en las regiones templadas, así como en los desiertos más secos del mundo. La mayoría de los lagartos se alimentan de insectos y otros artrópodos, pero los más grandes (como las iguanas) se alimentan de material vegetal, y los lagartos monitores que pueden alcanzar una longitud de hasta 3 my pesar hasta 250 kg pueden incluso alimentarse de cerdos, ciervos y otros mamíferos.

Serpientes

Al igual que los lagartos, las más de 2500 especies de serpientes deben gran parte de su éxito a sus mandíbulas altamente móviles que pueden usarse para capturar y tragar presas grandes. A pesar del hecho de que rara vez representan una amenaza real para las personas en los países desarrollados, las serpientes a menudo son perseguidas injustamente y merecen ser protegidas no solo por el papel beneficioso que desempeñan en el control de las poblaciones de roedores, sino también por la contribución que hacen. a la biodiversidad de la Tierra. Es contra la ley en muchos países (incluida la mayoría de los Estados Unidos) matar especies no venenosas y, a veces, incluso venenosas como la serpiente de cascabel de madera que se muestra arriba, ¡que está protegida en Wisconsin!

Cocodrilos

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Los cocodrilos modernos (un pequeño remanente de un grupo que alguna vez fue grande y exitoso) son (junto con las aves) los únicos miembros vivos de la línea de reptiles arcosaurios que dio origen a ambos grupos. Todos los cocodrilos (como el cocodrilo americano que se muestra arriba) tienen cráneos bien reforzados con una enorme musculatura de la mandíbula que proporciona una amplia abertura y un cierre rápido y poderoso sobre la presa. Sus muchos dientes afilados, que se colocan en cavidades (thecodont), están diseñados para jadear pero no para masticar. Una molleja musculosa (como la de los pájaros) termina el trabajo de triturar la comida con la ayuda de piedras tragadas y otros elementos.

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Las aves (que se dividen en dos grupos funcionales no taxonómicos: las ratites, o aves no voladoras, y las carinadas, formas voladoras con esternón en quilla) hacen su aparición en el registro fósil hace unos 150 millones de años, probablemente habiendo evolucionado desde pequeñas , dinosaurios bípedos. Con más de 9.000 especies (más que cualquier otro grupo de vertebrados excepto los peces con aletas radiadas), se encuentran en casi todos los hábitats de la tierra. En términos de su filogenia, las aves y los cocodrilos forman un grupo hermano monofilético y, por lo tanto, se ubican en el clado Archosauria, un grupo que también contiene los dinosaurios extintos y los pterosaurios (reptiles voladores).

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La clase Mammalia contiene más de 4.000 especies, que varían en tamaño desde pequeños murciélagos y musarañas hasta ballenas que pesan más de 100 toneladas. Tras la desaparición de los dinosaurios hace unos 65 millones de años, los mamíferos sufrieron una tremenda radiación adaptativa que llenó prácticamente todos los nichos ecológicos desocupados.

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La imagen de arriba muestra una vista ventral de un corazón de rana. El corazón anfibio contiene tres cámaras principales, un ventrículo de pared gruesa (1) y la aurícula derecha (2) y la aurícula izquierda (3) de paredes delgadas. El cono arterioso (4) surge del ventrículo y se divide para formar el tronco arterioso (5) a cada lado del corazón. Cada tronco arterioso se divide en tres vasos principales, el arco pulmocutáneo (6), que va a los pulmones y la piel, el arco sistémico (7), que va al cuerpo, y el arco carotídeo (8), que va a la cabeza. región.

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En el lado dorsal del corazón observe el seno venoso de paredes delgadas (4) que está formado por la convergencia de la vena cava anterior y la vena cava posterior. Las venas pulmonares (5) que llevan sangre oxigenada de los pulmones se unen para ingresar a la aurícula izquierda (3). También se ve en el modelo el ventrículo de pared gruesa (1), la aurícula derecha de pared delgada (2), los arcos pulmocutáneos (6), los arcos sistémicos (7) y los arcos carotídeos (8).

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En esta vista interna del modelo, se ha eliminado la porción ventral del corazón para revelar la disposición de las tres cámaras. Nótese la válvula en espiral (1) dentro del cono arterioso. Esta válvula dirige la sangre oxigenada y desoxigenada a los canales apropiados. Al bloquear y desbloquear la entrada común a los arcos pulmocutáneos izquierdo y derecho (6), la sangre con bajo contenido de oxígeno se deriva directamente a los pulmones y la piel, mientras que la sangre oxigenada se dirige a los arcos carotídeos (8) y sistémicos (7). Tenga en cuenta que la dirección del flujo de sangre oxigenada y desoxigenada a través del corazón se indica con flechas rojas y azules, respectivamente. Otras estructuras etiquetadas en el modelo incluyen el ventrículo (4), la aurícula derecha (2), la aurícula izquierda (3) y el tronco arterioso derecho e izquierdo (5).

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Esta imagen muestra algunas de las principales estructuras visibles en la superficie dorsal del cerebro de la rana. El cerebro de los vertebrados se divide en tres regiones principales, algunas de las cuales se subdividen aún más. La parte anterior más anterior es el prosencéfalo, que se divide en telencéfalo y diencéfalo. El cerebro medio, o mesencéfalo, se desarrolla sin más subdivisiones. El rombencéfalo se diferencia en metencéfalo y mielencéfalo. El telencéfalo más anterior tiene dos lóbulos olfatorios (1) y dos hemisferios cerebrales (2). Los lóbulos olfatorios terminan en los nervios olfatorios, que transportan impulsos desde las cavidades nasales al cerebro.

El mesencéfalo, inmediatamente posterior al diencéfalo, tiene dos grandes lóbulos ópticos (3) que sirven para integrar los impulsos nerviosos de los ojos. Tenga en cuenta que los lóbulos ópticos de la rana son grandes, lo que refleja la importancia de la vista para estos depredadores visuales. Posterior al mesencéfalo está el metencéfalo, que está representado por una porción estrecha y transversal del cerebro llamada cerebelo (4) el cerebelo está involucrado en la coordinación motora de la rana.

La porción más posterior del cerebro es el mielencéfalo, que consiste en el bulbo raquídeo (5) que se estrecha gradualmente hacia la médula espinal.Una depresión entre los dos lados de la médula oblonga llamada plexo coroideo (6) es parcialmente responsable de la secreción del líquido cefalorraquídeo de tipo linfático que llena los espacios llamados ventrículos en el cerebro y el canal central de la médula espinal.

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Esta imagen muestra algunas de las principales estructuras visibles en la superficie ventral del cerebro de la rana. Tenga en cuenta los lóbulos olfatorios mencionados anteriormente (2) y los nervios olfatorios asociados (1). En la superficie ventral del diencéfalo, los dos nervios ópticos (4) se cruzan para formar el quiasma óptico y desde allí se extienden a los tractos ópticos (5) que llevan impulsos a los lóbulos ópticos en la superficie dorsal del cerebro.

Nota: Los nervios olfativo y óptico son solo dos de los 10 pares de nervios craneales que poseen todos los anfibios.

Posterior al quiasma óptico hay una excrecencia ventral del diencéfalo llamada glándula pituitaria o hipófisis (6). Esta glándula endocrina (que en realidad consta de dos subdivisiones principales con diferentes orígenes embrionarios) regula muchas funciones corporales, incluso en los anfibios, los cambios en el color de la piel. Por delante del quiasma óptico se encuentran los grandes hemisferios cerebrales (3) del telencéfalo. Una vez más, se puede ver el bulbo raquídeo (7) del mielencéfalo, junto con los nervios craneales (mostrados en amarillo en el modelo) que surgen de esta porción más posterior del cerebro.

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La imagen de arriba muestra una vista dorsal de la parte anterior del esqueleto de una rana leopardo. El esqueleto de la rana se compone principalmente de elementos óseos y cartilaginosos. Las funciones de un esqueleto incluyen brindar apoyo al cuerpo, proteger los delicados órganos internos y las superficies de unión de los músculos. En los vertebrados, el esqueleto axial está formado por el cráneo, la columna vertebral, el esternón (esternón) y las costillas (que no están presentes en los anfibios).

La columna vertebral de las ranas está formada por 10 vértebras, la primera de las cuales se llama atlas (7), que se articula con la base del cráneo. El atlas es la única vértebra cervical de la rana. Las siguientes siete vértebras son las vértebras abdominales, seguidas de la vértebra sacra cuyos fuertes procesos transversales forman el sacro (8) que se unen con el íleon (9). La última vértebra es un hueso largo y muy modificado llamado urostilo (10).

Nota: La mayoría de los vertebrados tienen una cola sostenida por un vertebrado caudal, pero las ranas y los sapos son atípicos porque carecen de cola y, por lo tanto, se denominan anuros ("anfibios sin cola").

Observe el hecho de que las extremidades anteriores de la rana constan de dos huesos robustos: un húmero proximal (1) y un radiooulna distal (2). La mano está compuesta por varios carpos (3), metacarpianos (4) y elementos distales llamados falanges (5).

Las extremidades anteriores están sostenidas por una serie de huesos que forman la cintura pectoral. Estos huesos incluyen las supraescapulas (6) y las escápulas, clavículas, coracoides y esternón, que se ven mejor en la vista ventral de la rana en la página siguiente.

Laboratorio-10 18

La imagen de arriba muestra una vista ventral de la parte anterior del esqueleto de una rana leopardo.

Una vez más, tenga en cuenta que las extremidades anteriores de la rana constan de dos huesos robustos: un húmero proximal (1) y un radiooulna distal (2). La mano está compuesta por varios carpos (3), metacarpianos (4) y elementos distales llamados falanges (5).

Las extremidades anteriores están sostenidas por una serie de huesos que forman la cintura pectoral. Estos huesos incluyen las supraescapulas (vistas en la vista dorsal que se muestra en la página anterior), las escápulas (6), las clavículas (7), las coracoides (8) y el esternón (9), que se compone de varios huesos y piezas de cartílago separados. que no se distinguen fácilmente como elementos separados en la imagen de arriba.

Laboratorio-10 21

Esta imagen muestra el esqueleto de una rana toro en una posición sentada normal. Nótese el tamaño masivo del radioulna fusionado (5) de las extremidades anteriores y tibiofibula (13) de las extremidades posteriores, que refleja la capacidad de estos huesos para resistir las tensiones impuestas por los saltos largos y posteriores aterrizajes de estas ranas de cuerpo pesado.

Otros huesos etiquetados incluyen: supraescapula (1), escápula (2), parte posterior del esternón (3), húmero (4), carpos (6), metacarpianos (7), falanges (8), sacro (9), ilion (10), isquion (11), fémur (12), dos tarsales y mdash el astrágalo (14) y el calcáneo (15) y metatarsianos (16).

Laboratorio-10 22

Esta imagen muestra una vista posterior del esqueleto de una rana toro. Los aspectos de la columna vertebral y la cintura pélvica que son visibles incluyen la primera vértebra cervical que se llama atlas (1), la vértebra sacra cuyos procesos transversales forman el sacro (2), el ilion (3), el isquion (4) y el urostilo (5).

Como se muestra en la imagen, cada miembro trasero está compuesto por un fémur robusto (6) y tibiofibula (7), dos huesos del tarso llamados calcáneo (8) y astrágalo (9), los metatarsianos (10) y elementos óseos distales llamados falanges (11).

La supraescapula (12) y la escápula (13) de la cintura pectoral son visibles así como el húmero (14) de cada miembro anterior.

Laboratorio-10 23

Esta imagen muestra varios de los músculos principales de la superficie dorsal del muslo de rana. El músculo glúteo (1), que se origina en el ilion y se inserta en el fémur, rota el muslo. El piriforme (2) es un pequeño músculo ubicado cerca de la abertura de la cloaca. El músculo se origina en el uroestilo, se inserta en el fémur y funciona para extender y rotar el muslo. Como su nombre indica, el tríceps femoral (3) se divide en tres partes que se originan y se insertan en diferentes elementos esqueléticos. Todas funcionan, sin embargo, para flexionar el muslo y extender la caña. El semimembranoso (4), que se origina en el isquion y el pubis y se inserta en la tibiofibula, extiende el muslo y flexiona la caña. El bíceps femoral (5) que se encuentra entre el tríceps femoral y el semimembranoso se origina en el ilion y se inserta en la tibiofibula y el fémur. El bíceps femoral extiende y aduce el muslo y flexiona la caña. También se muestran en la imagen los dos músculos principales de la superficie dorsal de la pierna de la rana, el gastrocnemio (6) y el peroneo (7).

Laboratorio-10 24

Esta imagen muestra los músculos principales de la superficie ventral del muslo de rana. El sartorio (1) es un músculo largo en forma de correa que cubre la superficie anterior del muslo. Se origina en el pubis, se inserta en la tibiofibula y actúa para flexionar el muslo y la caña. El sartorio (2) de la pierna derecha se muestra con su extremo distal cortado y desviado para hacerlo más visible. El aductor largo (3), que se origina en el pubis y se inserta en el fémur, es un músculo delgado en forma de tira debajo del sartorio. Nota: Este músculo de la pierna derecha también se ha cortado en su extremo distal y se ha desviado para hacerlo más visible. Como su nombre lo indica, el aductor largo funciona para aducción del muslo. El aductor mayor (4), que también aduce el muslo, es un músculo grande que se ve como un triángulo cerca de la ingle cuando el sartorio está en su lugar. El músculo se origina en el isquion y el pubis y se inserta en el fémur. El semitendinoso (5) es un músculo profundo con dos cabezas que se encuentra debajo y entre el gracilis mayor y el aductor mayor. El músculo se origina en el isquion, se inserta en la tibiofibula. El semitendinoso extiende y aduce el muslo y flexiona la rodilla. El gracilis major (6) es un gran músculo que cubre en parte el aductor mayor. Se origina en el pubis, se inserta en la tibiofibula y actúa para extender el muslo y flexionar la caña.

Laboratorio-10 25

Esta imagen muestra una vista de cerca de algunos de los músculos principales de la superficie ventral del muslo de rana que se ve en la página anterior. Nótese nuevamente el músculo sartorio (1) que cubre la superficie anterior del muslo, el aductor mayor (2) y el gracilis mayor (3). En la página anterior no se ve el gracilis minor (4), un músculo delgado en forma de correa que cubre el margen posterior del muslo. Este músculo tiene el mismo origen, inserción y acción que el gracilis mayor mayor, es decir, se origina en el pubis, se inserta en la tibiofibula y actúa para extender el muslo y flexionar la caña.

Laboratorio 10 26

Esta imagen muestra dos de los músculos principales que se encuentran en la pierna de la rana. El gran gastrocnemio (1), el músculo de la pantorrilla que se encuentra en la superficie medial de la caña, se origina en el fémur, se inserta en el tendón de Aquiles y flexiona la caña y el pie. El peroneo (2), que se encuentra lateral al gastrocnemio, también se origina en el fémur pero se inserta en el extremo distal de la tibiofibula. El peroneo extiende la caña y el pie.

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Esta imagen muestra una vista ventral de algunos de los otros músculos principales de la caña de rana. Una vez más, observe el gran gastrocnemio (1) que cubre gran parte de la superficie posterior de la caña. Entre el gastrocnemio y la tibiofibula (2) se encuentra el tibialis posticus (3), un pequeño músculo firmemente adherido a la superficie posterior de la tibiofibula. Este músculo se origina en la tibiofibula, se inserta en los huesos del tarso y flexiona el pie. El cruris extensor (4) es un músculo corto que se encuentra fuertemente adherido a los dos tercios superiores de la tibiofibula. Se origina en el fémur, se inserta en la tibiofibula y extiende la caña. El tibialis anticus longus (5) es un pequeño músculo con dos vientres que se encuentra anterior a la tibiofibula. Se origina en el fémur y se inserta en los huesos del tarso. El tibialis anticus longus levanta el pie y flexiona el tobillo.

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En esta imagen de una rana preservada, se han eliminado la mandíbula inferior y la lengua para revelar los detalles de la superficie superior de la cavidad bucal. Las ranas son depredadores que capturan presas (generalmente insectos) con lenguas pegajosas que se adhieren al frente, una disposición que les permite evertir a cierta distancia. Las presas están sostenidas por dos filas de dientes maxilares pequeños y afilados (1) ubicados a cada lado de la mandíbula superior, así como por un par de dientes vomerine más grandes y ubicados más centralmente (2).

Las ranas respiran tomando aire a través de un par de fosas nasales externas que ingresan a la cavidad bucal a través de aberturas llamadas fosas nasales internas (3). Tenga en cuenta las aberturas de las trompas de Eustaquio (4) que se comunican con la cavidad del oído medio. Estas estructuras permiten a los vertebrados igualar la presión en ambos lados del tímpano.

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La imagen de arriba muestra una vista ventral de una rana preservada disecada con la piel y los músculos abdominales removidos. Tenga en cuenta que el órgano más grande y conspicuo es el hígado (1), que está dividido en tres lóbulos. Entre los lóbulos derecho e izquierdo del hígado se encuentra la vesícula biliar (2), que almacena la bilis (un jugo digestivo) que produce el hígado. Cuando es necesario para la digestión, la vesícula biliar secreta una pequeña cantidad que ayuda a descomponer los alimentos, específicamente las grasas. Las estructuras que pertenecen al sistema digestivo que se pueden ver incluyen el estómago (3), el intestino delgado (4) y el intestino grueso (5). Otras estructuras etiquetadas incluyen los cuerpos grasos de color naranja brillante o amarillo (6) que proporcionan suficiente energía para que una rana o un sapo se quede sin comida durante la hibernación o estivación (excavando para escapar del calor del verano y las condiciones áridas) durante más de un año, el corazón (7 ) y vejiga urinaria desinflada (8).

Nota: La vejiga urinaria de los anuros es una estructura membranosa que solo se infla cuando está llena de orina. Debido a que es tan delgado y altamente vascularizado, las ranas y los sapos pueden reabsorber agua de la vejiga durante tiempos de sequía, usándola como reservorio en tales situaciones.

Laboratorio-10 30

La imagen de arriba muestra otra vista ventral de una rana disecada con el hígado y la vesícula biliar extraídos para revelar los órganos subyacentes. Las estructuras que pertenecen al sistema digestivo que se pueden ver incluyen el estómago (1), el intestino delgado (2) y el intestino grueso (3). Otras estructuras etiquetadas que se pueden ver incluyen los pulmones derecho e izquierdo (4), el ventrículo (5), la aurícula izquierda (6) y la aurícula derecha (7) del corazón y el bazo (8), que es parte del sistema circulatorio. .

Laboratorio-10 31

La imagen de arriba muestra una vista ventral de la pared dorsal de una rana macho preservada. Las estructuras del sistema urogenital que se pueden ver incluyen el riñón izquierdo (1), adherido al cual en su extremo anterior hay un testículo ovalado de color crema (2). La vejiga urinaria (desinflada) (3) también se puede ver cubriendo una porción del extremo posterior del riñón izquierdo. Aunque se trata de una rana macho, los machos de muchas especies de ranas retienen oviductos vestigiales (4) que no tienen ningún propósito real. En las hembras, por supuesto, los huevos se producen y se retienen dentro de los oviductos hasta que se liberan durante el apareamiento. Otras estructuras etiquetadas incluyen los cuerpos grasos (5), el estómago (6), el lóbulo medio del hígado (7) y el pulmón izquierdo (8).

Laboratorio-10 32

Esta imagen muestra una vista ventral del corazón de una rana toro conservada. El corazón de todos los anfibios contiene tres cámaras y un ventrículo muscular y dos aurículas de paredes delgadas. Aunque existe cierta mezcla de sangre oxigenada y desoxigenada, este problema se reduce considerablemente debido a la presencia de una válvula en espiral que deriva la sangre oxigenada al cuerpo y la sangre pobremente oxigenada a los pulmones y la piel. Para obtener una vista más detallada de las principales estructuras y vasos del corazón, vea las imágenes del modelo de corazón de rana.

En la imagen de arriba observe el ventrículo grande (1), la aurícula izquierda (2) y la aurícula derecha (3). Tenga en cuenta que el cono arterioso (4) que sale del ventrículo se divide en dos grandes vasos, el tronco arterioso izquierdo (5) y el tronco arterioso derecho (6). Cada tronco arterioso da lugar a su vez a tres vasos denominados arcos aórticos, que consisten en la arteria carótida común (que va a la región de la cabeza), la arteria pulmocutánea (que va a los pulmones y la piel) y el arco sistémico (que va a la región de la cabeza). al resto del cuerpo). También tenga en cuenta que dos de los tres lóbulos del hígado (7), que es el órgano más grande de la cavidad corporal, se muestran en la imagen.

Laboratorio-10 33

La imagen muestra una vista ventral de algunas de las arterias principales de una rana toro preservada. Las arterias y venas de las muestras de disección a menudo se inyectan con látex de color para facilitar la visualización de la extensión del sistema circulatorio. Por convención, las arterias se inyectan con látex rojo y las venas con látex azul. Las arterias son vasos sanguíneos que conducen la sangre desde el corazón, mientras que las venas conducen la sangre hacia el corazón. Debido a este hecho, las arterias deben soportar una presión arterial mucho mayor y, por lo tanto, son más gruesas (y más fáciles de encontrar).

Las arterias etiquetadas incluyen los dos arcos sistémicos (1) que provienen del corazón. Estos vasos sanguíneos se unen para formar la gran aorta dorsal (2), que continúa hacia atrás hasta que se divide en las dos arterias ilíacas comunes que suministran sangre a las piernas. En el punto donde se unen los arcos sistémicos, la aorta dorsal emite una arteria celiacomesentérica corta (3) que se divide en la arteria celíaca (4) que va al estómago (5), páncreas e hígado y la arteria mesentérica (6) que va al intestino delgado, al intestino grueso y al bazo. También se ve en la imagen la gran vena cava posterior (7), que recibe sangre del hígado, los riñones y las gónadas.

Laboratorio-10 34

La imagen de arriba muestra otra vista ventral de algunas de las arterias principales de una rana toro preservada. Note nuevamente los dos arcos sistémicos (1) que provienen del corazón. Estos vasos sanguíneos se unen para formar la gran aorta dorsal (2), que continúa posteriormente hacia atrás hasta que se divide en las dos arterias ilíacas comunes (3) que suministran sangre a las piernas. Como se mencionó en la diapositiva anterior, en el punto donde se unen los arcos sistémicos, la aorta dorsal emite una arteria celiacomesentérica corta (4) que se divide en la arteria celíaca (5) que va al estómago, páncreas e hígado y a la arteria mesentérica. (6) que va al intestino delgado y grueso y al bazo (7).

Laboratorio-10 35

Aunque las venas normalmente transportan sangre directamente desde los capilares al corazón, en los anfibios este plan se ve interrumpido por lechos capilares en dos sistemas portales y en los sistemas porta hepático y renal. El sistema portal hepático consta de dos vasos principales, la vena abdominal ventral (1) en la pared del cuerpo ventral (a menudo rota durante la disección), que recolecta sangre de la pelvis, y la vena portal hepática, que recibe sangre del estómago (gástrica vena), intestino (vena mesentérica) y bazo (vena esplénica). El sistema portal renal conduce sangre desde las patas traseras directamente a los riñones a través de las venas portales renales. Otras estructuras etiquetadas en la imagen incluyen el corazón (2) y los tres lóbulos del hígado (3).

Laboratorio-10 36

  1. Synsacrum
  2. Pigostilo
  3. Procesos uncinados
  4. Esternón en quilla
  5. Furcula
  6. Hueso cuadrado

Muchos aspectos del esqueleto de las aves reflejan las demandas especiales del vuelo. Por ejemplo, observe la extensa fusión de elementos vertebrales. La vértebra torácica posterior, todas las vértebras lumbares y sacras y la anterior caudal se han fusionado en una sola estructura llamada synsacrum (1). El vertebrado caudal posterior se fusiona con el pigostilo (2), que sostiene la cola. Observe las pequeñas proyecciones que apuntan hacia adelante llamadas procesos uncinados (3) que conectan una costilla con la anterior. Estas estructuras sirven para proporcionar mayor soporte y rigidez a la estructura del avión.

Tenga en cuenta que las clavículas están fusionadas para formar la fúrcula (4), que a menudo se denomina "espoleta", y que el esternón grande tiene una quilla bien desarrollada (5), que proporciona una gran superficie para la unión del principales músculos de vuelo.

Finalmente, observe la articulación de la mandíbula aviar (que es idéntica a la de los reptiles no aviares). Aunque no es visible como un elemento separado, el hueso articular de la mandíbula inferior se articula con el hueso cuadrado (6) en el cráneo del pájaro. En los mamíferos, el hueso dentario (mandíbula), el único hueso de la mandíbula inferior, se articula con el hueso escamoso (una porción del hueso temporal en los seres humanos). Ya no es necesario con esta nueva articulación de la mandíbula, los huesos articular y cuadrado migran hacia el oído medio para convertirse en el martillo y el yunque, respectivamente, dos de los tres huesecillos del oído de los mamíferos que conducen el sonido desde el tímpano al oído interno.

Synsacrum y pigostyle

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La imagen de arriba muestra cómo la estructura rígida del esqueleto del pájaro está formada por una extensa fusión de los elementos vertebrales. Como se menciona en la descripción general del esqueleto del ave, la torácica posterior, todas las vértebras lumbar y sacra y caudal anterior se han fusionado en una sola estructura llamada synsacrum (1). El vertebrado caudal posterior se fusiona con el pigostilo (2), que sostiene la cola.

Procesos uncinados de la caja torácica de las aves.

Laboratorio-10 38

La imagen de arriba muestra cómo los procesos uncinados (3) de un pájaro conectan una nervadura con la anterior, proporcionando mayor soporte y rigidez a la estructura del avión.

Esternón y fúrcula en quilla

Laboratorio-10 39

Observe en la imagen de arriba que, a diferencia de los de la mayoría de los tetrápodos, el esternón (4) del ave no es plano, sino que se extiende hacia delante como una gran quilla que proporciona una gran superficie para la unión de los dos músculos principales del vuelo (el pectoral mayor y supracoracoideus). Observe también cómo las clavículas del ave se han fusionado en una estructura llamada furcula (5), que a menudo se conoce como el "hueso de los deseos".

Hueso cuadrado de la mandíbula de pájaro

Laboratorio-10 40

Finalmente, observe la articulación de la mandíbula aviar (que es idéntica a la de los reptiles no aviares). Aunque no es visible como un elemento separado, la articulación de la mandíbula inferior se articula con el hueso cuadrado (6) del cráneo del pájaro. En los mamíferos, el hueso dentario (mandíbula), el único hueso de la mandíbula inferior, se articula con el hueso escamoso (una porción del hueso temporal en los seres humanos). Ya no es necesario con esta nueva articulación de la mandíbula, los huesos articular y cuadrado migran hacia el oído medio para convertirse en el martillo y el yunque, respectivamente, dos de los tres huesecillos del oído de los mamíferos que conducen el sonido desde el tímpano al oído interno.

Laboratorio-10 41

La imagen de arriba resalta las diversas regiones de la columna vertebral del gato. Tenga en cuenta que hay siete vértebras cervicales (cuello) (1), que es el mismo número que se encuentra en la mayoría de los mamíferos. Las dos primeras vértebras cervicales (C1 y C2) se denominan atlas y eje respectivamente. Hay 13 vértebras torácicas (2), que además de su función de soporte axial, soportan las costillas. Luego vienen siete vértebras lumbares (3), seguidas de tres vértebras sacras (4) que se fusionan en el sacro y un número variable (21-23) vértebras caudales (5) que sostienen la cola. Para obtener vistas más detalladas del cráneo y la región cervical, la cintura pectoral, las extremidades de la fuente y el esternón, la cintura pélvica y las extremidades posteriores, consulte a continuación.

Cráneo / Región Cervical

Laboratorio-10 42

Esta imagen muestra la región del esqueleto del gato que contiene el cráneo y las primeras seis (de siete) vértebras cervicales. La primera vértebra cervical (1), que se llama atlas, se articula con dos proyecciones del cráneo llamadas cóndilos occipitales y permite el movimiento hacia arriba y hacia abajo de la cabeza. La segunda vértebra cervical (2), que se llama eje, permite el movimiento de rotación del cráneo.

Faja Pectoral / Esternón

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Esta imagen muestra la región del esqueleto del gato que contiene la cintura pectoral y sus apéndices asociados, así como el esternón. Las extremidades anteriores se componen de tres huesos principales: el húmero (1), el radio (2) y el cúbito (3). Estos apéndices están sostenidos por la cintura pectoral, que consiste en una escápula izquierda y derecha (4) en los gatos. Tenga en cuenta que las clavículas del gato flotan libremente y están incrustadas en el tejido muscular, es decir, no se articulan con ningún otro hueso (como lo hacen en los humanos). Nota: En el esqueleto preparado, estos huesos están sostenidos por dos trozos de alambre unidos al hueso más anterior del esternón y que en la imagen de arriba, solo la clavícula izquierda (5) está etiquetada.

El esternón (que sirve para la unión de las porciones cartilaginosas de nueve pares de costillas) está compuesto por ocho segmentos llamados esternebras, el primero de los cuales es una estructura comprimida lateralmente llamada manubrio (6), seguido de seis esternebras (7) que forman el cuerpo del esternón y una pieza caudal denominada apófisis xifoides (8).

Cintura pélvica

Laboratorio-10 44

Esta imagen muestra la región del esqueleto del gato que contiene la cintura pélvica y sus apéndices * adjuntos, los fémures (1). La cintura pélvica consta de tres pares de huesos, el ilion (2), el isquion (3) y el pubis (4) que se fusionan en una estructura rígida. También se ven en la imagen cuatro de las últimas siete vértebras lumbares (5), las tres vértebras sacras (6) que se fusionan para formar un sacro al que se une la cintura pélvica y dos de las vértebras caudales (7).

* Nota: Para ver los otros huesos principales de las extremidades traseras del gato, haga clic aquí.

Extremidades traseras

Esta imagen muestra los tres huesos principales de las patas traseras del gato, los fémures (1), las tibias (2) y los peroné (3), así como el más grande de los siete huesos del tarso, el calcáneo (4) o el hueso del talón. . También se ve en la imagen la rótula (5) o "rótula" de la pierna izquierda, así como el isquion (6) y el pubis (7) de la cintura pélvica y varias vértebras caudales (8).


Persistencia, impactos y factores ambientales de las infecciones encubiertas en huéspedes invertebrados

Fondo: Se ha propuesto que las infecciones encubiertas persistentes del mixozoo, Tetracapsuloides bryosalmonae, en huéspedes invertebrados primarios (el briozoo de agua dulce, Fredericella sultana) representan un reservorio de enfermedad renal proliferativa en huéspedes secundarios de peces. Sin embargo, tenemos un conocimiento limitado de cómo las infecciones encubiertas persisten y varían en las poblaciones de briozoos a lo largo del tiempo y el espacio y cómo pueden afectar a estas poblaciones. Además, es probable que estudios anteriores hayan subestimado la prevalencia de infecciones encubiertas. Para mejorar nuestra comprensión de la dinámica, los impactos y las implicaciones de las infecciones encubiertas, empleamos un ensayo de reacción en cadena de la polimerasa (PCR) de alta sensibilidad y llevamos a cabo la primera investigación de infecciones encubiertas en el campo durante un período anual mediante el muestreo de briozoos cada 45 días de tres poblaciones. dentro de cada uno de los tres ríos.

Resultados: Las infecciones encubiertas persistieron durante todo el año y la prevalencia varió dentro de los ríos y entre ellos, pero a menudo era & gt 50%. La variación en la temperatura y la química del agua se relacionaron con cambios en la prevalencia de una manera consistente con el mantenimiento de infecciones encubiertas durante períodos de baja productividad y, por lo tanto, malas condiciones de crecimiento tanto para briozoos como para T. bryosalmonae. La presencia y el aumento de la gravedad de las infecciones encubiertas redujeron el crecimiento del huésped, pero solo cuando los briozoos también estaban invirtiendo en la producción de propágulos de hibernación (estatoblastos). Sin embargo, debido a que la producción de estatoblasto es transitoria, es poco probable que este efecto afecte en gran medida la capacidad de las poblaciones de briozoos para actuar como fuentes persistentes de infecciones y, por lo tanto, posibles brotes de enfermedades en las poblaciones de peces de cultivo y silvestres.

Conclusiones: Demostramos que las infecciones encubiertas están generalizadas y persisten en el espacio y el tiempo en las poblaciones de briozoos. Hasta donde sabemos, este es el primer estudio a largo plazo de infecciones encubiertas en un entorno de campo. La revisión de los resultados de este y de estudios anteriores nos permite identificar cuestiones clave relacionadas con la ecología y la evolución de las estrategias de infección encubierta y las interacciones asociadas entre el huésped y el parásito.

Palabras clave: Briozoos Estrategias de infección encubierta Reservorios de enfermedades de los peces Fredericella sultana Efectos dependientes de la condición del hospedador Mixozoos Productividad Enfermedad renal proliferativa Temperatura Tetracapsuloides bryosalmonae.


Comprensión de gráficos

una. En México, ¿qué porcentaje de la población tiene entre 0 y 4 años? _______ ¿En los EE.UU? ______
B. ¿Qué población está creciendo más rápidamente? ________
C. ¿Qué grupo de edad tiene el menor número en ambos países? _____

Para estimar la población de gansos en el norte de Wisconsin, los ecólogos marcaron 10 gansos y luego los devolvieron a la población. Durante un período de 6 años, los gansos quedaron atrapados y se registró su número.

una. ¿Usa la fórmula para calcular el número estimado de gansos en el área estudiada? _____________
B. Esta técnica se llama ____________ y ​​______________.
C. Suponiendo que más gansos encontrados en la trampa tuvieran la marca, ¿el número estimado de gansos en el área sería mayor o menor? _____

Otro ecologista usa un método diferente para estimar la cantidad de hongos en un bosque. Ella traza un área de 10 & # 21510 y elige al azar 5 lugares, donde cuenta el número de hongos en las parcelas y los registra en la cuadrícula.


Biología (BIO)

los en negrita la primera línea comienza con una abreviatura en mayúscula que designa el área temática seguida por el número y el título del curso. También se muestra el valor de la hora de crédito.

Componentes: Indica que el curso tiene múltiples componentes, como conferencia (LEC) y laboratorio (LAB). Las horas correspondientes de contacto con el profesorado se incluyen entre paréntesis [por ejemplo, LEC (2), LAB (3)] pero no están relacionadas con la cantidad de créditos que recibe el estudiante.

los Descripción del curso describe los temas que se tratan en el curso.

Requisitos previos: Trabajo del curso y / u otros requisitos que se deben completar antes de tomar el curso.

Correquisitos: Curso (s) que deben tomarse en el mismo trimestre.

& quot Cursos recomendados & quot: Requisitos previos o correquisitos que no son necesarios para la inscripción en un curso en particular, pero que ayudarían al estudiante a completar con éxito ese curso.

& quot Atributo de educación general para estudiantes admitidos antes del otoño de 2020 & quot: Indica los atributos de educación general que se aplican a un curso en particular para un estudiante cuyo período de admisión universitaria es anterior al otoño de 2020.

& quot Atributo de educación general para estudiantes admitidos en el otoño de 2020 y después & quot: Indica los atributos de educación general que se aplican a un curso en particular para un estudiante cuyo período de admisión universitaria es el otoño de 2020 o posterior.

& quotGen Ed Atributo & quot: Indica los atributos de educación general que se aplican a un curso en particular, independientemente del período de admisión universitaria del estudiante.

Clave de educación general: Lista de áreas de educación general disponibles que un curso en particular puede satisfacer. Ciertas áreas no pueden satisfacerse simultáneamente con el mismo curso. Consulte Requisitos de educación general para obtener más información.

  • SD - Requisito distributivo científico
  • BSD - Requisito distributivo de ciencias sociales y del comportamiento
  • HD - Requisito distributivo de humanidades
  • AD - Requisito distributivo de las artes
  • EC - Requisito de composición en inglés
  • I - Requisito interdisciplinario
  • J - Requisito de comunidades diversas
  • W - Requisito de énfasis en la escritura
  • SE - Requisito de énfasis en el habla
  • ET - Requisito de ética
  • F - Clúster de Cultura de Lenguas Extranjeras
  • AR - Clúster de cultura árabe
  • ASL - Grupo de cultura del lenguaje de señas estadounidense
  • CC - Clúster de Cultura de Civilizaciones Clásicas
  • FA - Clúster de cultura del área francesa y francófona
  • GER - Clúster de cultura alemana
  • IT - Clúster de cultura italiana
  • REE - Clúster de cultura rusa y europea del este
  • SP - Clúster de Cultura Española

Educación a distancia: Indica si un curso está aprobado para ser ofrecido a través de educación a distancia. Consulte el horario de clases para obtener más detalles.

Consentimiento: El departamento debe dar permiso para que un estudiante se inscriba en un curso. Generalmente se hace a través de un código electrónico que se crea en myWCU, lo que permite al estudiante inscribirse en el curso.

Ofrecido típicamente: Indica en qué semestre se suele ofrecer el curso. La disponibilidad no está garantizada, ya que algunos cursos no se ofrecen todos los años.

Repetible por crédito: Indica si un alumno puede realizar el curso más de una vez y obtener crédito. Verifique el número máximo permitido de créditos con el departamento.

Listado cruzado: Indica si hay otras ofertas de cursos que se consideran equivalentes a la lista de cursos.

BIO 100. Ciencias Biológicas Básicas. 3 créditos.

LEC (2), LAB (2)
Principios básicos de biología. Teoría celular, metabolismo, genética, desarrollo, diversidad de formas de vida y ecología. No está abierto a estudiantes de biología.
Atributo Gen Ed: Requisito distributivo científico.
Normalmente se ofrece en otoño, primavera y verano.

BIO 110. Biología general. 3 créditos.

LEC (2), LAB (3)
Los conceptos generales de todos los organismos vivos como estructura y función celular, genética, evolución y ecología. Este curso está diseñado para especializaciones en biología y áreas científicas relacionadas.
Atributo Gen Ed: Requisito distributivo de la ciencia.
Normalmente se ofrece en otoño, primavera y verano.

BIO 204. Introducción a la microbiología. 4 créditos.

LEC (3), LAB (2)
La biología de los microorganismos de importancia médica, su estructura, taxonomía, fisiología, control e interacciones huésped-parásito. No se puede tomar como una asignatura optativa de biología.
Requisitos previos / Co: BIO 204 requiere requisitos previos de BIO 100 o BIO 110.
Normalmente se ofrece en otoño, primavera y verano.

BIO 214. Microbiología general. 4 créditos.

LEC (3), LAB (3)
La biología de los microorganismos, su estructura, fisiología y control de la naturaleza y dinámica de las enfermedades y principios de control de enfermedades de la microbiología alimentaria, industrial y ambiental. El laboratorio se ocupará de técnicas microbiológicas, aislamiento e identificación de microbios y análisis de agua y alimentos. Este curso es para estudiantes de biología.
Requisitos previos / Co: BIO 214 requiere el requisito previo de BIO 110.
Normalmente se ofrece en otoño, primavera y verano.

BIO 215. Botánica general. 3 créditos.

LEC (2), LAB (3)
Un estudio de las plantas y los organismos similares a las plantas, desde las bacterias hasta las angiospermas, incluidas las angiospermas, con énfasis en la anatomía, fisiología, reproducción e importancia económica.
Requisitos previos / Co: BIO 215 requiere el requisito previo de BIO 110.
Normalmente se ofrece en otoño y primavera.

BIO 217. Zoología general. 3 créditos.

LEC (2), LAB (3)
Principios de biología animal. Forma y función de los tipos de animales vertebrados e invertebrados.
Requisitos previos / Co: BIO 217 requiere el requisito previo de BIO 110.
Normalmente se ofrece en otoño y primavera.

BIO 220. Fisiología celular. 3 créditos.

LEC (2), LAB (3)
Una introducción a la biología celular y molecular con énfasis en morfología celular, bioquímica y fisiología celular.
Requisitos previos / Co: BIO 220 requiere requisitos previos de BIO 110 y CHE 231.
Atributo Gen Ed: Énfasis en la escritura.
Normalmente se ofrece en otoño y primavera.

BIO 230. Genética. 3 créditos.

Naturaleza del material genético y su variación cualitativa y cuantitativa: interacción de recombinación de productos génicos, regulación del material genético y su papel en la evolución.
Requisitos previos / Co: BIO 230 requiere requisitos previos de BIO 110 y MAT 121 o MAT 125.
Normalmente se ofrece en otoño y primavera.

BIO 259. Anatomía y Fisiología Humana I. 4 Créditos.

LEC (3), LAB (2)
Introducción a la estructura y función humanas. Se enfatizan los sistemas esquelético, muscular y nervioso. El laboratorio implica el estudio del desarrollo humano y la anatomía macroscópica de los sistemas esquelético, muscular y nervioso. No se puede tomar como una asignatura optativa de biología.
Requisitos previos / Co: BIO 259 requiere un requisito previo de BIO 100 o BIO 110.
Normalmente se ofrece en otoño, primavera y verano.

BIO 265. Anatomía y fisiología para ingenieros. 4 créditos.

LEC (3), LAB (2)
Un curso de un semestre en Anatomía y Fisiología Humana para Ingenieros Biomédicos que cubre los siguientes sistemas de órganos: sistemas esqueletomuscular, nervioso, cardiovascular, respiratorio, urinario y digestivo. El curso cubrirá los principales problemas que pueden ocurrir con cada sistema, incluidos problemas en las articulaciones, trastornos del sistema nervioso, enfermedades cardiovasculares, enfermedades pulmonares y trastornos de los sistemas urinario y digestivo.
Requisitos previos / Co: BIO 265 requiere requisitos previos de una C o mejor en BIO 110, y una D o mejor en CHE 103 y CHE 104.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 269. Anatomía y fisiología humana II. 4 créditos.

LEC (3), LAB (2)
Continuación de BIO 259. Se enfatizaron los sistemas endocrino, circulatorio, respiratorio, inmunológico, digestivo y urogenital. No se puede tomar como una asignatura optativa de biología.
Requisitos previos / Co: BIO 269 requiere el requisito previo de BIO 259.
Normalmente se ofrece en otoño, primavera y verano.

BIO 270. Ecología. 3 créditos.

LEC (2), LAB (3)
Relaciones entre los organismos vivos y su entorno.
Requisitos previos / Co: BIO 270 requiere el requisito previo de BIO 110.
Normalmente se ofrece en otoño y primavera.

BIO 277. Ecología de vertebrados. 3 créditos.

LEC (2), LAB (2)
Ecología de vertebrados. Vida animal en las localidades circundantes. Identificación, comportamiento, hábitats, alimentación y reproducción.
Requisitos previos / Co: BIO 277 requiere requisitos previos de BIO 100 o BIO 217.
Normalmente se ofrece en otoño.

BIO 307. Fisiopatología. 3 créditos.

Un estudio integrado de los procesos involucrados en el complejo sistémico corporal total a medida que cambia de la condición homeostática ordenada al estado de enfermedad desequilibrada. El uso de modelos de enfermedad, con consideraciones clínicas, fortalece los conceptos. No se puede tomar como una asignatura optativa de biología.
Requisitos previos / Co: BIO 307 requiere requisitos previos de C- o mejor en BIO 259 y BIO 269.
Normalmente se ofrece en otoño y primavera.

BIO 310. Aplicaciones bioestadísticas. 3 créditos.

LEC (2), LAB (3)
El diseño, análisis estadístico, visualización gráfica y presentación de investigaciones biológicas.
Requisitos previos / Co: BIO 310 requiere requisitos previos de BIO 110 y MAT 121 o MAT 125.
Normalmente se ofrece en otoño y primavera.

BIO 311. Temas contemporáneos en la enseñanza de la biología. 3 créditos.

Las tendencias curriculares en la educación en biología, biotecnología y bioética se analizan en un contexto social a través de una controversia constructiva. Se explora la naturaleza de la ciencia y se perfeccionan las habilidades experimentales mediante la aplicación práctica a través de un programa de tutoría de profesores y estudiantes orientado al laboratorio. No se puede tomar como una asignatura optativa de biología.
Requisitos previos / Co: BIO 311 requiere requisitos previos de BIO 110, BIO 215, BIO 217, BIO 230, EDF 300 y EDP 250.
Normalmente se ofrece en otoño.

BIO 312. Botánica marina. 3 créditos.

LEC (2), LAB (3)
Este curso introducirá a los estudiantes a identificar y clasificar algas y pastos marinos microscópicos y macroscópicos de hábitats marinos y estuarinos. El trabajo de campo a lo largo de la costa este de los EE. UU. Se centrará en la identificación y ecología de su macroflora marina única. Los temas que se cubrirán incluyen: estructura de algas y pastos marinos, taxonomía y clasificación, reproducción e historias de vida, distribución y ecología, impactos humanos en las plantas marinas y los impactos de las plantas marinas en los asuntos humanos, recolección y preservación de plantas marinas y producción de espécimen de herbario.
Requisitos previos / co: BIO 312 requiere el requisito previo BIO 215 o el permiso del instructor.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 313. Biología marina. 3 créditos.

El curso está destinado a proporcionar una introducción general a la biología de los organismos marinos.Las conferencias se centrarán en la diversidad, la ecología y las adaptaciones de los organismos que viven en el medio marino.
Requisitos previos / Co: BIO 313 requiere requisitos previos de BIO 215 y BIO 217.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 314. Microbiología patógena. 4 créditos.

LEC (2), LAB (4)
Estudio sistemático de bacterias patógenas con amplia experiencia de laboratorio en el manejo e identificación de estos organismos.
Requisitos previos / Co: BIO 314 requiere un requisito previo de BIO 214.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 315. Ecología de ecosistemas terrestres. 3 créditos.

LEC (2), LAB (3)
Transferencia de materiales y energía a través del ecosistema terrestre con énfasis en el ciclo del carbono, el agua y los nutrientes. Se enfatizan las respuestas de los ecosistemas al cambio climático.
Requisitos previos / Co: BIO 315 requiere requisitos previos de BIO 110, BIO 215, BIO 217 y BIO 270.
Normalmente se ofrece en otoño.

BIO 333. Técnicas de Biología Molecular. 2 créditos.

Una introducción a las técnicas de laboratorio para la biología molecular que incluyen digestiones con enzimas de restricción, electroforesis en gel, clonación de genes en E. coli, aislamiento de ARN y ADN y reacción en cadena de la polimerasa.
Requisitos previos / Co: BIO 333 requiere requisitos previos de BIO 230 y BIO 204 o BIO 214 y CHE 231.
Normalmente se ofrece en otoño y primavera.

BIO 334. Genética microbiana. 4 créditos.

LEC (3), LAB (3)
Un curso sobre genética de bacterias, sus virus, plásmidos y elementos transponibles. Aplicaciones de la genética microbiana en ingeniería genética y biotecnología.
Requisitos previos / Co: BIO 334 requiere requisitos previos de BIO 110 y BIO 214 y BIO 230 y CHE 231.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 357. Anatomía comparada de vertebrados. 4 créditos.

LEC (2), LAB (4)
Estudio comparativo de los principales sistemas de órganos de los vertebrados en cuanto a su estructura, función y relaciones evolutivas.
Requisitos previos / Co: BIO 357 requiere el requisito previo de BIO 217.
Normalmente se ofrece en otoño.

BIO 367. Fisiología de las interacciones farmacológicas. 3 créditos.

Introducción al mecanismo de acción de los fármacos prototipo. Se enfatizarán las alteraciones fisiológicas producidas por diversos fármacos, así como las interacciones entre clases de fármacos.
Requisitos previos / Co: BIO 367 requiere requisitos previos de BIO 269 o BIO 468 o BIO 469.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 377. Entomología. 3 créditos.

LEC (2), LAB (3)
La estructura, función, clasificación, importancia económica y significado biológico de los insectos.
Requisitos previos / Co: BIO 377 requiere el requisito previo de BIO 110 o BIO 217.
Normalmente se ofrece en otoño.

BIO 387. Zoología de invertebrados. 3 créditos.

LEC (2), LAB (1)
Este curso investiga la biología de los invertebrados, un grupo enormemente dispar de organismos con una amplia gama de morfologías, fisiologías e historias de vida. Enfatiza las características comunes entre los diferentes grupos de invertebrados, prestando especial atención a la fisiología, el desarrollo, los grados de construcción, la ecología, la sistemática y el comportamiento. Además del formato tradicional de laboratorio y conferencias, los estudiantes participarán en excursiones y realizarán presentaciones que tocarán algún aspecto de la zoología de invertebrados.
Requisitos previos / co: BIO 387 requiere el requisito previo de BIO 217 o el permiso del instructor.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 407. Internado hospitalario en Ciencias de Laboratorio Médico, Otoño. 13 créditos.

(con BIO 408) Una cita de trabajo y estudio de dos semestres con un hospital afiliado. La finalización satisfactoria de esta pasantía es aceptada como el trabajo del último año por la Universidad de West Chester. Esta pasantía en el hospital preparará al estudiante para tomar el Examen Nacional ASCP para Científicos de Laboratorio Médico. Los estudiantes que hayan completado 65 horas crédito en el B.S. La concentración general de biología debe postularse para esta pasantía en el verano siguiente a su segundo año. Los estudiantes deben tener un GPA general de 2.75 y la aprobación del Departamento de Biología y el hospital afiliado.
Requisitos previos / co: BIO 407 requiere requisitos previos de admisión en un programa MLS de un hospital afiliado y un GPA mínimo de 2.75.
Consentimiento: Se requiere permiso del Departamento para agregar.
Normalmente se ofrece en otoño.

BIO 408. Internado hospitalario en Ciencias de Laboratorio Médico, Primavera. 13 créditos.

(y BIO 407) Una cita de trabajo y estudio de dos semestres con un hospital afiliado. La finalización satisfactoria de esta pasantía es aceptada como el trabajo del último año por la Universidad de West Chester. Esta pasantía en el hospital preparará al estudiante para tomar el Examen Nacional para Científicos de Laboratorio Médico. Los estudiantes que hayan completado 65 horas crédito en el B.S. La concentración general de biología debe postularse para su pasantía en el verano siguiente a su segundo año. Los estudiantes deben tener un GPA general de 2.75 y la aprobación del Departamento de Biología y el hospital afiliado.
Prerrequisitos / Co: BIO 408 requiere un prerrequisito de BIO 407 y un GPA acumulativo mínimo de 2.75.
Consentimiento: Se requiere permiso del Departamento para agregar.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 409. Pasantía en Ciencias Biológicas. 3-16 créditos.

Una cita de trabajo y estudio de un semestre con una agencia comercial, industrial o gubernamental. Los estudiantes serán supervisados ​​conjuntamente por un científico profesional de la agencia y un miembro de la facultad del Departamento de Biología. Se puede aplicar un máximo de ocho créditos combinados de BIO 409 y BIO 491 al total de créditos de biología.
Pre / Co requisitos: BIO 409 requiere prerrequisitos: Biología con un GPA de 2.5 en general 2.50 en biología y aprobación del comité de currículo de biología.
Consentimiento: Se requiere permiso del Departamento para agregar.
Repetible por crédito.

BIO 412. Evolución orgánica. 3 créditos.

Una introducción a los conceptos, procesos y mecanismos generales de la Biología Evolutiva desde perspectivas moleculares, de organismos y de población.
Requisitos previos / co: BIO 412 requiere un requisito previo de BIO 230 y 9 horas de biología.
La oferta de educación a distancia puede estar disponible.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 414. Microbiología industrial y aplicada. 3 créditos.

Este curso rastrea las aplicaciones históricas y actuales de la microbiología en la industria y la sociedad. Los temas cubiertos durante las conferencias incluyen diseño de edificios y equipos, seguridad microbiológica, fermentación, tratamiento de desechos, compost y producción de alimentos. El curso también presenta conferencias invitadas de varios microbiólogos en ejercicio involucrados en la industria.
Requisitos previos / Co: BIO 414 requiere el requisito previo de BIO 214.
Normalmente se ofrece en otoño.

BIO 415. Ecología y conservación tropical. 3 créditos.

La ecología de los biomas que comprenden los trópicos. Se pondrá énfasis en los problemas de conservación contemporáneos en áreas tropicales.
Requisitos previos / Co: BIO 415 requiere requisitos previos de BIO 110, BIO 215, BIO 217 y BIO 270.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 421. Biología celular y molecular. 4 créditos.

LEC (3), LAB (3)
Una conferencia y un curso de laboratorio que estudia las bases moleculares de la vida celular. Se enfatizará la estructura y función de las células eucariotas.
Requisitos previos / Co: BIO 421 requiere requisitos previos de BIO 220 y BIO 333 y CHE 232.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 422. Biología del cáncer. 3 créditos.

Un curso integral basado en conferencias que cubre los aspectos genéticos, moleculares, histológicos y terapéuticos de la biología del cáncer. El curso está diseñado en torno a las características emergentes del cáncer y las características habilitantes del cáncer como enfermedad.
Requisitos previos / Co: BIO 422 requiere requisitos previos de BIO 214, BIO 220 y BIO 230.
Normalmente se ofrece en otoño.

BIO 428. Histología animal. 3 créditos.

LEC (2), LAB (2)
Un estudio de la estructura microscópica y la función de los tejidos y órganos de los vertebrados.
Requisitos previos / Co: BIO 428 requiere requisitos previos de BIO 110 y BIO 217.
Normalmente se ofrece en otoño.

BIO 431. Genética molecular. 3 créditos.

Un segundo curso de genética, que cubre la biología molecular de los eventos genéticos. Se hará hincapié en los detalles moleculares de los procesos genéticos básicos, como la replicación y transcripción del ADN, la traducción del ARN y la síntesis de proteínas, el código genético, los mecanismos moleculares de regulación de genes y una introducción a la biotecnología.
Requisitos previos / Co: BIO 431 requiere requisitos previos de BIO 230 y CHE 232.
Normalmente se ofrece en otoño y primavera.

BIO 435. Temas del curso en Biología. 1-3 créditos.

Los cursos de esta serie son de interés oportuno para el estudiante. Los temas pueden incluir terminología biológica, técnicas de laboratorio, micología, etc. Abierto solo para estudiantes de ciencias de tercer y cuarto año.
La oferta de educación a distancia puede estar disponible.
Normalmente se ofrece en primavera.
Repetible por crédito.

BIO 436. Temas del curso en Biología. 1-3 créditos.

Los cursos de esta serie son de interés oportuno para el estudiante. Los temas pueden incluir terminología biológica, técnicas de laboratorio, micología, etc. Abierto solo para estudiantes de ciencias de tercer y cuarto año.
Repetible por crédito.

BIO 438. Temas del curso en Biología. 1-3 créditos.

Los cursos de esta serie son de interés oportuno para el estudiante. Los temas pueden incluir terminología biológica, técnicas de laboratorio, micología, etc. Abierto solo para estudiantes de ciencias de tercer y cuarto año.
Repetible por crédito.

BIO 440. Genética humana. 3 créditos.

Un estudio detallado de los principios de la herencia humana. Examina el impacto de la genética en los problemas actuales de la medicina humana, la farmacología, la evolución y la sociología, y evalúa los problemas éticos relacionados con estos temas.
Requisitos previos / Co: BIO 440 requiere un requisito previo de BIO 230.
Atributo de educación general: requisito de ética, énfasis en la escritura.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 443. Introducción a la metodología de expresión genética. 3 créditos.

Teoría y aplicación práctica de metodologías de ARN utilizadas en expresión génica.
Requisitos previos / Co: BIO 443 requiere un requisito previo de BIO 333.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 448. Desarrollo animal. 4 créditos.

LEC (3), LAB (3)
Introducción a los principios del desarrollo animal con estudio de laboratorio de embriones de vertebrados.
Requisitos previos / Co: BIO 448 requiere requisitos previos de BIO 110 y BIO 217 y BIO 220 y BIO 230.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 452. Parasitología. 3 créditos.

Biología de los principales parásitos del hombre y los animales domésticos. El énfasis está en los ciclos de vida de los parásitos comunes, la identificación de formas de diagnóstico y la comprensión de las enfermedades asociadas con los parásitos de mayor importancia económica y médica.
Requisitos previos / Co: BIO 452 requiere requisitos previos de BIO 204 o BIO 214 y BIO 217.
Normalmente se ofrece en otoño.

BIO 453. Mamíferos marinos. 3 créditos.

Un examen integrado de mamíferos marinos. Se hará hincapié en la evolución del grupo y la morfología funcional, el comportamiento y la fisiología únicos de los cetáceos, pinnípedos y sirenios.
Prerrequisitos / Co: BIO 453 requiere un prerrequisito de BIO 217 y 12 créditos de BIO Major Courses.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 454. Micología. 3 créditos.

Un curso introductorio que incluye un estudio general de la biología de los hongos y un estudio del campo de la micología médica.
Requisitos previos / Co: BIO 454 requiere requisitos previos de BIO 110 y BIO 214.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 456. Virología. 3 créditos.

Biología molecular de virus bacterianos, vegetales y animales Clasificación de virus, ultraestructura, mecanismos de replicación y efectos de la infección por virus en la célula huésped.
Requisitos previos / Co: BIO 456 requiere requisitos previos de BIO 214 y BIO 230 y CHE 232.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 457. Morfología animal funcional. 3 créditos.

Un estudio de la estructura, forma y función de las adaptaciones morfológicas en animales examinadas a través de una perspectiva mecánica, ecológica y evolutiva.
Requisitos previos / co: BIO 457 requiere un requisito previo o correquisito de BIO 217.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 464. Fisiología microbiana. 4 créditos.

LEC (2), LAB (3)
Variaciones fisiológicas y bioquímicas observadas en procariotas y eucariotas inferiores.
Requisitos previos / Co: BIO 464 requiere requisitos previos de BIO 214 y BIO 230 y CHE 232.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 465. Inmunología. 4 créditos.

LEC (3), LAB (3)
Estructura y función de la inmunoglobulina, naturaleza de los antígenos, inmunidad mediada por células, hipersensibilidad, regulación de la inmunidad y enfermedades inmunológicas. Experiencia de laboratorio en técnicas inmunológicas.
Requisitos previos / Co: BIO 465 requiere requisitos previos de BIO 214 y CHE 232.
Normalmente se ofrece en otoño y verano.

BIO 466. Fisiología vegetal. 3 créditos.

LEC (2), LAB (3)
Procesos fisiológicos de las plantas. Fotosíntesis, respiración, metabolismo intermedio, entrada de solutos a la planta, metabolismo del agua y reguladores del crecimiento.
Requisitos previos / Co: BIO 466 requiere requisitos previos de BIO 215 y CHE 231.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 467. Endocrinología. 3 créditos.

Una mirada integradora a la fisiología del sistema endocrino de los mamíferos en la regulación y mantenimiento de la homeostasis. Se incluirá la patología asociada al desequilibrio hormonal.
Requisitos previos / Co: BIO 467 requiere requisitos previos de C o mejor en BIO 217 y BIO 220 y C o mejor en un curso de BIO de nivel 300 o 400.
Normalmente se ofrece en otoño.

BIO 468. Fisiología comparada de vertebrados. 4 créditos.

LEC (3), LAB (3)
Fisiología comparada de peces, anfibios, reptiles, aves y mamíferos, con énfasis en los mecanismos reguladores homeostáticos basados ​​en órganos.
Requisitos previos / Co: BIO 468 requiere requisitos previos de BIO 217 y BIO 220.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 469. Fisiología humana. 4 créditos.

LEC (3), LAB (3)
Principios teóricos y aplicados de la fisiología humana presentados desde un enfoque órgano-sistema. Se hace hincapié en los mecanismos reguladores homeostáticos. No se puede tomar como una asignatura optativa de biología.
Requisitos previos / Co: BIO 469 requiere requisitos previos de BIO 220 y BIO 230 y CHE 232.
Normalmente se ofrece en otoño.

BIO 470. Biología de poblaciones. 3 créditos.

LEC (2), LAB (3)
Un segundo curso cuantitativo en ecología, enfatizando patrones de distribución y fluctuaciones en abundancia de poblaciones naturales.
Requisitos previos / Co: BIO 470 requiere requisitos previos de BIO 270 y MAT 121 o MAT 125 y MAT 143 o MAT 145 o MAT 161.
Normalmente se ofrece en otoño.

BIO 471. Humedales. 3 créditos.

LEC (2), LAB (3)
Un curso diseñado para brindar experiencia práctica en la clasificación, delimitación, regulación, manejo y prácticas de mitigación de humedales. Se enfatizan las características abióticas y bióticas de los humedales continentales y costeros.
Normalmente se ofrece en verano.

BIO 473. Biología de la conservación. 3 créditos.

La aplicación de principios biológicos y ecológicos básicos para la preservación de la diversidad biológica. Se hará hincapié en comprender las amenazas a la biodiversidad, los valores de la biodiversidad y las estrategias de preservación, incluida la evaluación de riesgos ecológicos y la gestión de especies, hábitats y ecosistemas en peligro de extinción.
Requisitos previos / Co: BIO 473 requiere requisitos previos de BIO 110 y BIO 215 o BIO 217 y BIO 270.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 474. Ecología microbiana. 4 créditos.

LEC (3), LAB (3)
Teoría y aplicación de la ecología microbiana moderna. Las conferencias se centrarán en temas como comunidades microbianas, interacciones con otros organismos, biogeoquímica y biotecnología.
Requisitos previos / Co: BIO 474 requiere requisitos previos de BIO 110 y BIO 214 y BIO 270 y CHE 103 y CHE 104.
Normalmente se ofrece en otoño.

BIO 475. Comunidades vegetales. 3 créditos.

LEC (2), LAB (3)
Un estudio de las estrategias ecológicas, morfológicas y fisiológicas de las plantas desde la semilla hasta la etapa adulta. Se cubrirá la integración de estas estrategias para explicar las principales comunidades vegetales de América del Norte.
Requisitos previos / Co: BIO 475 requiere el requisito previo de BIO 215.
Normalmente se ofrece en otoño.

BIO 476. Ecología de agua dulce. 3 créditos.

LEC (2), LAB (3)
Las características ambientales y biológicas del agua dulce. Se hace hincapié en los métodos de campo, la evaluación de la calidad del agua basada en la interpretación de conjuntos de datos completos y las estrategias de gestión de lagos, estanques y arroyos.
Requisitos previos / Co: BIO 476 requiere requisitos previos de BIO 270 y CHE 104.
Normalmente se ofrece en otoño.

BIO 478. Evolución vegetal. 3 créditos.

Aplicación de la teoría filogenética contemporánea para explicar la génesis de la biodiversidad vegetal. Se exploran los orígenes de las adaptaciones críticas de las plantas con respecto al tiempo de origen, las condiciones ambientales y la ascendencia.
Prerrequisitos / Co: BIO 478 requiere prerrequisito: BIO 215 o permiso del instructor.
La oferta de educación a distancia puede estar disponible.
Normalmente se ofrece en primavera y verano.

BIO 480. Microscopía óptica y la célula viva. 3 créditos.

Una conferencia de un semestre y un curso de laboratorio que cubre la teoría y las técnicas prácticas de todos los tipos de microscopía óptica y sus usos en la investigación de células vivas. También incluye técnicas como microinyección, electrofisiología celular y otras. Fuerte énfasis en el trabajo "práctico" con el equipo.
Requisitos previos / Co: BIO 480 requiere requisitos previos de BIO 110 y BIO 215 o BIO 217.
Normalmente se ofrece en primavera.

BIO 484. Epidemiología. 3 créditos.

Un estudio general de la epidemiología de las enfermedades infecciosas y no infecciosas, incluidos los problemas de salud relacionados con la industria y el medio ambiente.
Requisitos previos / Co: BIO 484 requiere el requisito previo de BIO 214.
Normalmente se ofrece en otoño.

BIO 485. Botánica sistemática. 3 créditos.

LEC (2), LAB (3)
Principios de evolución ilustrados por los principios de taxonomía vegetal. Conceptos modernos de biosistemática. Experiencia práctica en identificación de plantas.
Requisitos previos / Co: BIO 485 requiere el requisito previo de BIO 215.
La oferta de educación a distancia puede estar disponible.
Normalmente se ofrece en otoño.

BIO 490. Seminario de Biología. 3 créditos.

SEM (1,5), LEC (1,5)
Informes sobre temas especiales y desarrollos actuales en las ciencias biológicas.
Requisitos previos / co: BIO 490 requiere requisitos previos de 18 créditos de BIO de los 90 créditos del trabajo del curso.
Normalmente se ofrece en otoño, primavera y verano.

BIO 491. Problemas especiales en biología. 1-3 créditos.

Curso de tutoría principalmente para licenciados avanzados en biología capaces de realizar estudios e investigaciones independientes sobre un problema aprobado por el instructor supervisor. Se puede aplicar un máximo de ocho créditos combinados de BIO 409 y BIO 491 a las asignaturas optativas de biología.
Requisitos previos / co: BIO 491 requiere un requisito previo de un GPA general de 2.50 y un GPA BIO de 2.50.
Consentimiento: Se requiere permiso del Departamento para agregar.
Repetible por crédito.

Universidad de West Chester de Pensilvania
700 South High St, West Chester, PA 19383
610-436-1000 [Mapa]
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10.1: Laboratorio de invertebrados I - Biología

Este es uno de los muchos ejercicios disponibles en Anatomía de invertebrados en línea , un manual de laboratorio en Internet para cursos de zoología de invertebrados. Se puede acceder a ejercicios adicionales haciendo clic en los enlaces de la izquierda. También se encuentran disponibles un glosario y capítulos sobre suministros y técnicas de laboratorio. La terminología y la filogenia utilizadas en estos ejercicios corresponden al uso en el libro de texto de Invertebrate Zoology de Ruppert, Fox y Barnes (2004). Las leyendas de figuras con guiones se refieren a figuras del libro de texto. Las leyendas que no están separadas por guiones se refieren a figuras incluidas en el ejercicio. El glosario incluye términos de este libro de texto, así como los ejercicios de laboratorio.

Bilateria, Protostomia, Platyhelminthes P, Turbellaria C, Seriata, Tricladida O, Dugesiidae F (Figura 10-32)

Los gusanos planos, o platelmintos, son metazoos simétricos bilateralmente con tres capas de tejido. A diferencia de la mayoría de los animales triploblásticos, son compactos y no tienen celoma (cavidad corporal) que rodee las vísceras ni sistema hemal. El intestino, si está presente, tiene una sola abertura al exterior. Está presente un cerebro anterior con concentración asociada de órganos de los sentidos, como se esperaba de los bilaterales. Los gusanos planos son animales complejos con elaborados sistemas reproductivos hermafroditas. La fertilización es interna con la cópula. Pueden ser de vida libre o parásitos.

Las 4500 especies descritas de gusanos planos de vida libre se incluyen en el taxón heterogéneo Turbellaria (Fig. 10-32 *), mientras que los trematodos parásitos y las tenias pertenecen a otro taxón, Neodermata. Los turbellarios son carnívoros que varían en longitud desde menos de 1 mm hasta 60 cm de longitud, pero la gran mayoría son pequeños. Muchos son aproximadamente del tamaño de los protozoos ciliados, con los que se confunden fácilmente. El cuerpo es cilíndrico en las especies pequeñas (microturbellaria, figura 10-2) y aplanado dorsoventralmente en las grandes (macroturbellaria, figura 10-1). La epidermis está ciliada. La boca se encuentra en algún lugar de la línea media ventral y se abre a un intestino ciego, o cavidad gastrovascular, que carece de ano y, a veces, carece de luz. La mayoría son acuáticos, habitan los océanos y el agua dulce, pero algunos se encuentran en ambientes terrestres húmedos. La mayoría son bentónicos.

La osmorregulación y la regulación de fluidos se logran con protonefridia (Fig. 10-20). No existe un sistema hemal y el transporte es por difusión, lo que se ve facilitado por el pequeño tamaño corporal y el aplanamiento. Los nutrientes se distribuyen a los tejidos por difusión desde el intestino, mientras que el oxígeno se difunde por la superficie del cuerpo.

El producto final del metabolismo del nitrógeno es el amoníaco, que se pierde por difusión a través de la superficie corporal. El sistema nervioso consta de un cerebro bilobulado, o ganglio cerebral, del que surgen cordones nerviosos longitudinales que se extienden posteriormente a lo largo del cuerpo (fig. 10-11). Los ocelos de taza de pigmento sensibles a la luz se encuentran en varias posiciones del cuerpo. Los turbellarios son hermafroditas con fertilización interna.

Debido a la gran heterogeneidad de Turbellaria no hay un ejemplo típico, aunque el triclad, Girardia tigrina (= Dugesia tigrina), se utiliza a menudo en los laboratorios de enseñanza como si lo fuera. Las triclads son macroturbellarios en los que el intestino comprende tres ramas, o rami (Fig. 1,10-14D). Una rama es anterior y dos son posteriores a la faringe plicada situada ventralmente, cerca del cuerpo medio, en la unión de las tres ramas. Cada rama está ramificada en sí misma con muchos ciegos que se ramifican para alcanzar y distribuir alimentos por todo el cuerpo.

Girardia tigrina es una de varias especies de gusanos planos triclad de agua dulce conocidos colectivamente como & quotplanarians & quot. Este ejercicio emplea montajes enteros, secciones transversales y cultivos vivos disponibles comercialmente. Las especies suministradas por las casas comerciales varían pero son similares y todas son adecuadas para este ejercicio. El ejercicio está escrito específicamente para & quotbrown planaria & quot.

Las tricladas habitan en agua dulce donde son más comunes debajo de piedras, hojas u otros objetos cerca de la orilla. Son negativamente fototácticas. Se pueden recolectar en aguas dulces locales, si están presentes, colocando pequeños trozos de carne magra en el fondo durante 10-15 minutos.

Con el microscopio de disección o de baja potencia del microscopio compuesto, estudie un compuesto completo con dos planarias fijas y teñidas, una con el intestino inyectado con colorante y el otro plano, con el intestino no inyectado (Fig. 1, 10-31 *). Nótese el aplanamiento dorsoventral y simetría bilateral. Busque el eje antero-posterior, Cuál es el eje de simetria. los plano de simetría incluye este eje y divide el gusano en Derecha y izquierda lados. Las muestras generalmente se montan en el portaobjetos con la parte posterior o la superficie dorsal hacia arriba.

El extremo anterior del cuerpo es el cabeza y el resto es el maletero. Girardia tigrina tiene una cabeza triangular puntiaguda pero la cabeza de algunas especies es roma y redondeada. El límite posterior de la cabeza está marcado por un par de protuberancias quimiosensoriales laterales, ciliadas, aurículas. Estos se desarrollan de forma diversa en diferentes especies y, a veces, están ausentes. Los dos oscurosocelos, o manchas oculares, se ven fácilmente al nivel de las aurículas.

El sistema digestivo se estudia mejor con una muestra que ha sido alimentada con una sustancia coloreada como polvo de carmín o negro de carbón y, por lo tanto, tiene un intestino lleno de pigmento. Debe haber disponible una cantidad completa de dicha muestra, ya sea en el portaobjetos que está utilizando o montada por separado.

Localice el cilíndrico faringe acostado en la línea media en el centro del cuerpo (Fig. 1, 10-31A). La faringe es un tubo protrusible y musculoso alojado en un espacioso cavidad faríngea que se abre al exterior por la boca. El estrecho luz faríngea, que puede contener pigmento, ocupa el centro de la faringe. La cavidad faríngea está rodeada por el vaina faríngea.

Figura 1. El planario, Girardia tigrina, en vista dorsal. Flatworm27L.gif

La boca, que rara vez es visible en monturas enteras, es un pequeño poro en la línea media ventral del cuerpo inmediatamente posterior a la faringe. Es la apertura de la cavidad faríngea al exterior. Durante la alimentación, la faringe se alarga muchas veces su longitud de reposo y se extiende fuera de la boca para alcanzar la comida.

El extremo proximal de la faringe se abre hacia el intestino que, en triclads, se divide inmediatamente en uno anterior y dos ramas posteriores. El nombre Tricladida (revestido = rama) alude a la presencia de los tres rami. Cada rama termina a ciegas y tiene abundantes ceca, o divertículos, de modo que ningún área del cuerpo esté más allá de la distancia de difusión efectiva de la fuente de alimento.

Están presentes numerosas protonefridias, pero no son visibles en estas preparaciones. A veces, algunas características del sistema reproductivo pueden verse por detrás de la faringe, pero es raro que se puedan discernir lo suficiente como para darle sentido (fig. 10-31E). El estudio del sistema nervioso tampoco es práctico (Fig. 10-11C).

Examine una diapositiva preparada de secciones transversales de planaria. Utilice un portaobjetos comercial con tres secciones transversales tomadas a diferentes niveles a lo largo del gusano. Por lo general, hay uno a través del extremo anterior del cuerpo, uno a través de la faringe (Fig. 3) y otro a través de la parte posterior del gusano (Fig. 2). Sin embargo, los portaobjetos no son uniformes y no necesariamente se ajustan a este ideal, ni puede confiar en el orden en el que están dispuestas las secciones en el portaobjetos.

Localice e identifique cada una de las tres secciones de su diapositiva. La sección faríngea suele ser fácil de reconocer (Fig. 3). Una buena sección faríngea muestra la faringe grande e inconfundible como un círculo rojo hueco rodeado por un anillo blanco estrecho en el centro de la sección. Las secciones anterior y posterior tienen de uno a muchos círculos irregulares distribuidos a través del parénquima (Fig. 2). Estos círculos son las ramas intestinales y su ciego (Fig. 2).

Sección transversal anterior o posterior

Comience con la sección anterior o posterior (Fig.2), es decir, una que no pase a través de la faringe. No importa cuál elija y puede resultarle rentable usar ambos, pero asegúrese de no tener la sección faríngea. Asegúrese de distinguir dorsal de ventral. La superficie ventral suele ser más plana que la superficie dorsal arqueada (en la mayoría de las diapositivas estará hacia abajo).

Figura 2. Sección transversal del cuerpo de Girardia tigrina posterior a la faringe. Flatworm28L.gif

El cuerpo está cubierto por una capa secretora monocapa. epidermis (Figura 2). La epidermis ventral, pero no dorsal, es ciliado, hecho que se puede verificar mediante una observación cuidadosa con alta potencia (400X). Los cilios se utilizan para la locomoción y las células epiteliales son multiciliadas. La superficie dorsal no está ciliada. Compare los epitelios dorsal y ventral para asegurarse de que puede reconocer cilios. La epidermis está sustentada por un distintivo lámina basal, que es visible como una línea delgada y oscura justo dentro de la epidermis.

La epidermis dorsal contiene numerosos vesículas secretoras y secreciones encerradas por membranas en forma de varilla, la rabditas (rhabd = varilla). Las rabditas son sintetizadas por células de la glándula epidérmica insertadas (sumergidas) debajo de la lámina basal en el parénquima (fig. 10-5). Cuando se expulsan a la superficie, las rabditas absorben agua y se expanden para convertirse en una mucosidad pegajosa que puede ayudar a atrapar a las pequeñas presas de invertebrados.

Tenga en cuenta los grupos de células de la glándula adhesiva situado en el borde lateral de la epidermis ventral (Fig 2). Estos son parte de una zona adhesiva libre de cilios que rodea al gusano. Estas células secretan un adhesivo que ayuda al animal a agarrar el sustrato. La epidermis ventral contiene numerosas células glandulares que secretan moco.

Una capa gruesa de pared corporal. músculos, que consta de fibras longitudinales internas y circulares externas, se encuentra justo dentro de la epidermis (Fig. 2, 10-3C).

Dentro de la capa muscular, el interior del gusano está lleno de tejido conectivo mesenquimatoso, el parénquima, que consta de células en una matriz extracelular fibrosa y tiene un aspecto suelto y abierto (Fig. 10-13B). Muchas células grandes de la glándula epidérmica están sumergidas en él, pero sin embargo se abren a la superficie a través de cuellos estrechos que atraviesan la lámina basal y la epidermis.

Músculos dorsoventrales se puede ver pasando verticalmente a través del parénquima que conecta las capas musculares de las paredes dorsal y ventral del cuerpo. Estos músculos mantienen la forma plana del cuerpo triclad.

Dispersas en el interior hay secciones a través del rami intestinal y ellos ceca (Figura 2, 10-13B). Estos son círculos irregulares de varios tamaños y un número impredecible. El espacio despejado en el interior de cada uno es el lumen intestinal y está rodeado por un epitelio monocapa de células grandes vacuoladas, que pueden ser secretoras, absorbentes o fagocíticas. Este epitelio generalmente se conoce como el gastrodermis, o epitelio mucoso.

Consulte ahora la sección transversal faríngea, que debería parecerse a la Figura 3. Revise las características ahora familiares que identificó en las otras secciones y luego estudie la enorme faringe en el centro.

los faringe ocupa casi todo el centro de la sección y la pared del cuerpo es muy delgada por encima y por debajo de ella. Localice e identifique los dos espacios blancos sin teñir asociados con la faringe. El que está en el centro de la faringe es el luz faríngea mientras que el que rodea la faringe es el cavidad faríngea. Este tipo de faringe, conocida como faringe plegada y que consiste en un tubo muscular retráctil en una vaina, es característico de las tricladas y las polícladas (Fig. 1, 10-16B).

Moviéndose hacia afuera desde el lumen en el centro de la faringe, las capas son, en orden: luz faríngea, gastrodermis, capa muscular interna, parénquima (tejido conectivo), capa muscular externa, epitelio, cavidad faríngea, y epitelio de la vaina de la faringe (Fig. 3).

Figura 3. Corte transversal a través de la región faríngea de Girardia tigrina. Flatworm29L.gif

Coloque un gusano vivo en una gota de agua en un portaobjetos de microscopio sin cubreobjetos. Los gusanos vivos se pueden recoger con una pipeta de plástico, pero deben ser expulsados ​​rápidamente o se adherirán a su pared usando sus glándulas adhesivas. Se adhieren tenazmente y son difíciles de quitar de la pipeta cuando esto sucede.

Observe el gusano con el microscopio de disección. Míralo mientras se mueve por el tobogán. La mayor fuerza locomotora es producida por los cilios de la epidermis ventral, pero la actividad muscular también juega un papel en la locomoción, especialmente en los movimientos de giro. Manipule al gusano con una aguja diminuta para estimularlo a cambiar de dirección. Intente descubrir las contribuciones de la musculatura a esta maniobra y piense qué músculos estarían involucrados en el giro. Los triclads no nadan.

Empuje el gusano suavemente con la aguja y busque evidencia de capacidad adhesiva. ¿Dónde parecen estar ubicadas las células adhesivas? _________________

Observe al animal con luz transmitida y busque el intestino y su ciego. Estos pueden ser obvios, especialmente si el gusano se ha alimentado recientemente.

& gt a. Coloque un cubreobjetos sobre el gusano y coloque el portaobjetos en el microscopio compuesto. El peso del cubreobjetos apretará el gusano lo suficiente como para inmovilizarlo y hacerlo lo suficientemente delgado como para ver alguna estructura interna. Retire un poco de agua de la preparación para exprimir aún más al animal. No utilice 400X en estas diapositivas.

Enfoque, con 100-200X, en el borde de la cabeza, reduzca la luz y busque evidencia de golpes cilios. La mayoría de los cilios de los animales son ventrales y, por lo tanto, difíciles de ver en su totalidad, pero la cabeza tiene cilios asociados con receptores quimiosensoriales en las aurículas y su actividad es obvia. Búscalos en el borde de las aurículas. El nombre & quotturbellaria & quot significa & quot; pequeña perturbación & quot y es una referencia al movimiento del agua causado por los cilios de las aurículas. Observa los cilios con contraste de fase si lo tienes.

Aumente la luz para que pueda iluminar parte del interior. A 40X, es posible que pueda ver divertículos intestinales, especialmente si el animal ha comido recientemente. La faringe es el área visible, larga y pálida en el centro del cuerpo. Si se aprieta lo suficiente al animal, es posible que vea la faringe con claridad e incluso puede ver la boca abriéndose en su extremo posterior. La faringe probablemente se moverá en la cámara faríngea y puede aumentar de longitud. & lt

& gt b. Coloque tres o cuatro gusanos en el centro de un plato de cultivo pequeño (6 cm). Coloque un trozo pequeño (de unos 2-3 mm de diámetro) de yema de huevo duro, carne de res magra o hígado de res en el plato con las lombrices. Apague el microscopio y las luces de la habitación. Girardia tigrina es fototáctico negativo y es posible que no esté dispuesto a alimentarse con luz brillante, aunque a veces no parece importar. Coloque el plato en la platina del microscopio de disección teniendo cuidado de no molestar al gusano. Si tiene suerte, verá que el gusano sobresale de su faringe y se alimenta (Fig. 10-31D). La vista es impresionante y puede que te sorprenda la longitud de la faringe. La yema de huevo es especialmente buena para este ejercicio porque los gránulos de yema de color amarillo brillante son fáciles de ver a medida que ascienden por la luz faríngea para acumularse en el intestino. Después de varios minutos de alimentación, observe el intestino para ver si ahora se pueden visualizar el ciego y las ramas. & lt

Girardia tigrina típicamente se reproduce asexualmente por arquitomía (Fig. 10-22B), un tipo de fisión en la que el gusano se divide en dos fragmentos sin diferenciación previa de nuevas partes. La hendidura transversal inmediatamente posterior a la faringe divide al gusano en un gusano anterior, casi normal, con cabeza, boca, faringe y la mayor parte del intestino, y una masa posterior incompleta y sin cabeza de tejidos que debe reemplazar las partes faltantes.

Después de la división, el extremo anterior se comporta normalmente, pero el extremo posterior permanece inmóvil hasta que se completa la regeneración y se reemplazan las partes faltantes. No es probable que vea que se produzca una fisión, pero, si su laboratorio mantiene poblaciones en los acuarios, es muy posible que vea estos bultos sin cabeza pegados en las paredes de los acuarios.

& gt C. Las tricladas tienen habilidades regenerativas notables y son capaces de reparar daños o reemplazar partes faltantes del cuerpo si se fragmentan experimentalmente. El proceso imita la arquitomía. Agregue aproximadamente 20 ml de agua del estanque al plato que contiene su (s) muestra (s). Retire la yema de huevo y las lombrices en exceso de una lombriz grande.

Use un bisturí afilado para cortar la muestra restante en pedazos. Tú decides cómo quieres cortar el gusano. Algunas posibilidades obvias son bisecarlo con cortes transversales o longitudinales. O podrías trisecarlo. O puede dividir la cabeza para ver si puede producir un gusano de dos cabezas (si elige esta opción, deberá visitar el laboratorio todos los días para renovar la incisión y evitar que las dos mitades de la cabeza vuelvan a crecer juntas.

Use un rotulador para etiquetar el costado del plato con su nombre y la fecha. Cubra el plato con otro plato y déjelo a un lado en un área oscura del laboratorio. Haz bocetos cuidadosos de las piezas del gusano. Observe sus muestras durante cada período de laboratorio durante el resto del semestre. Haga bocetos cada semana y compárelos con bocetos anteriores. ¿Ves evidencia de regeneración? & lt

* Las llamadas con guiones, como esta, se refieren a las cifras de Ruppert, Fox y Barnes (2004). Los que no tienen separación de palabras se refieren a las figuras incluidas en este ejercicio.

FA marrón . (ed) 1950. Tipos de invertebrados seleccionados. Wiley, Nueva York. 597p.

Hyman LH. 1951.Los invertebrados: Platyhelminthes y Rhynchocoela, vol. II. McGraw-Hill, Nueva York. 550p.

Pennak RW . 1989. Invertebrados de agua dulce de los Estados Unidos, 3 ed. Wiley, Nueva York. 628p.

Petrunkevitch A . 1916. Morfología de tipos de invertebrados. MacMillan, Nueva York. 263p.

Pierce SK, Maugel TK. 1987. Anatomía ilustrada de invertebrados. Universidad de Oxford. Prensa, Oxford.

Rieger RM y col. 1991. Platyhelminthes: Turbellaria, en Harrison, F. W. & amp B. J. Bogitsh (eds.). 1991. Anatomía microscópica de invertebrados vol. 3 Platelmintos y Nemertinea . Wiley-Liss, Nueva York. 347p.

Riser NW, Morse MP (eds). 1974. Biología de la Turbellaria. McGraw-Hill, Nueva York. 530 págs.

Ruppert EE, Fox RS, Barnes RB. 2004. Zoología de invertebrados, Un enfoque evolutivo funcional, 7ª ed. Brooks Cole Thomson, Belmont CA. 963 págs.

Plato de cultivo Carolina de 6 cm

Diapositivas preparadas: Wholemount teñido con intestino relleno, cortes transversales teñidos de las regiones anterior, media y posterior,


Angot, M.: Vie et économie des mers tropicales, [Russ. transl. del francés]. 336 págs. Moscú: Progreso 1964.

Anderson, H.: El género gasterópodo Bembicio Filipos. Aust. J. mar. Freshwat. Res. 9 (4), 546–568 (1958).

Ansell, A. D.: Reproducción, crecimiento y mortalidad de Venus estriatula (Da Costa) en Kames Bay, Millport. J. mar. biol. Culo. REINO UNIDO. 41 (1), 191–215 (1961).

Ayers, J. C.: Dinámica poblacional de la almeja marina Mya arenaria. Limnol. Oceanogr. 1 (1), 26–36 (1956).

Baird, R. H.: Notas sobre una vieira (Pecten maximus) población en Holyhead Harbour. J. mar. biol. Culo. REINO UNIDO. 46 (1), 33–47 (1966).

Banse, K.: Über das Verhalten von meroplanktischen Larven im geschichteten Wasser. Kieler Meeresforsch. 12 (2), 188–200 (1955).

-: Über den Transport von meroplanktischen Larven aus dem Kattegat in die Kieler Bucht. Ber. dt. wiss. Kommn Meeresforsch. 14 (2), 147–164 (1956).

- y [S. Lefevere: Funde von Branchiostoma lanceolatum (Pallas) in der Kieler Bucht. Kieler Meeresforsch. 10 (1), 130–133 (1954).

Barnes, H. y M. Barnes: Elminius modestus Darwin: más récords europeos. Progr. Oceanogr. 3, 23–30 (1965).

- y M. Barnes: Elminius modestus Darwin: una extensión reciente de la distribución y su estado actual en la parte sur de la costa atlántica francesa. Cah. Biol. mar. 9 (3), 261–268 (1968).

- y M. Barnes: Elminius modestus Darwin: registros de su distribución actual y abundancia en la Bahía de St. Malo y en la región de St. Jean-de-Luz. J. exp. mar. Biol. Ecol. 3 (2), 156–161 (1969).

Belyaev, G. M.: Fauna del fondo de las profundidades ultra-abisales del Océano Mundial, [Russ.]. 247 págs. Moscú: Nauka 1966.

Bergquist, P. R., M. E. Sinclair y [J. J. Hogg: Adaptación a la existencia intermareal: ciclos reproductivos y desarrollo larvario en Demospongiae. Symp. zool. Soc. Lond. 25, 247–271 (1970).

Bernard, F.: Decapoda Eryonidae (Eryoneicus et Willemoesia). Dana Rep. 37, 1–93 (1953).

Bernstein, T. P.: Zooplancton de la región de la Tierra de Franz-Joseph. [Russ.]. Trudy arkt. nauchno-issled. Inst. 2, 3–35 (1932).

Blacker, R. W.: Los animales bentónicos como indicadores de las condiciones hidrográficas y el cambio climático en las aguas de Svalbard. Fishery Invest., Lond. (Ser. 2) 20 (10), 1–49 (1956).

-: Cambios recientes en el bentos de los caladeros de West Spitsbergen. Especificaciones. Publs int. Commn NW. Atlant. Pez. 6, 791–794 (1965).

Blake, J. A.: Reproducción y desarrollo larvario de Polydora del norte de Nueva Inglaterra (Polychaeta: Spionidae). Ofelia 7 (1), 1–63 (1969).

Boaden, P. J. S.: Pastoreo en el hábitat intersticial: una revisión. En: Pastoreo de ambientes terrestres y marinos, págs. 299–303. Ed. por D. J. Crisp. Oxford: Publicaciones científicas de Blackwell 1964.

Bogorov, B. G.: La importancia de diferentes grupos de animales en la biomasa de zooplancton de varias regiones del mar de Kara. [Russ.]. Dokl. Akad. Nauk SSSR 50, 175–176 (1945).

-: Zooplancton recolectado por la expedición “Sedov” 1937-1939. [Russ., Engl. Resumen]. Trans. Expedición sobre hielo a la deriva en el océano Ártico central en el rompehielos “G. Sedov ”, 1937-1940. Biología 3, 336-370 (1946a).

-: Algunas notas sobre el zooplancton en la Cuenca Polar. Sci. Res. de la expedición del avión “SSSR-N-169” en la región del “Polo de Inaccesibilidad”, [Russ. Engl. Resumen]. págs. 180–196. Leningrado: Glavsevmorput 1946b.

Boolootian, R. A., A. C. Giese, J. S. Tucker y [A. Farmanfarmaian: Una contribución a la biología de un equinoide de aguas profundas Allocentrotus fragilis (Jackson). Biol. Toro. mar. biol. Laboratorio, Woods Hole 116 (3), 362–372 (1959).

Buchanan, J. B.: La biología de Calocaris macandreae (Crustáceos: Thalassinidea). J. mar. biol. Culo. REINO UNIDO. 43 (3), 729–747 (1963).

-: La biología de Echinocardium cordatum (Echinodermata: Spatangoidea) de diferentes hábitats. J. mar. biol. Culo. REINO UNIDO. 46 (1), 97–114 (1966).

Burbanck, W. D.: Un estudio ecológico de la distribución del isópodo Cyathura polita (Stimpson) de aguas salobres de Cape Cod, Massachusetts. Soy. Midl. Nat. 67 (2), 449–476 (1962).

Chapman, G.: Los capullos de huevo de Scoloplos armiger O. F. Müller. Biol. Toro. mar. biol. Laboratorio, Woods Hole 128 (2), 189–197 (1965).

Chia, Fu-Shiang: comportamiento inquietante de una estrella de mar de seis rayos Leptasria hexactis. Biol. Toro. mar. biol. Laboratorio, Woods Hole 130 (3), 304-315 (1966a).

-: Desarrollo de una estrella cojín de aguas profundas, Pteraster tesselatus. Proc. Calif. Acad. Sci. 34 (13), 505-510 (1966b).

-: Reproducción de invertebrados marinos del Ártico. Toro. mar. Polución 1 (5), 78–79 (1970).

Chittleborough, R. G. y [L. R. Thomas: Ecología larvaria del cangrejo de río de Australia Occidental, con notas sobre otras larvas de panulíridos del este del Océano Índico. Aust. J. mar. Freshwat. Res. 20 (3), 199–223 (1969).

Chmyznikova, V. L.: Zur Kenntnis des Zooplanktons von Matotschkin Schar und einiger Küstengebiete von Nowaja Semlja. [Russ., Resumen alemán]. Issled. Másî SSSR 12, 131–150 (1931).

-: Zooplancton yuzhnoi i yugo-vostochnoi chastei Karskogo morya. [Russ., Resumen alemán]. Issled. Másî SSSR 24, 232–258 (1936).

-: Distribución de indicadores biológicos en los sonidos de Shokal'sky y Vil'kitsky. [Russ.]. Trudy arkt. nauchno-issled. Inst. 82, 145–159 (1937).

Christiansen, M. E. y [B. Christiansen: Trömsö Museum Biological Svalbard Expedition 1958. The Crustacea Decapoda of Isfjord: una comparación con la expedición sueca Spitsbergen en 1908. Acta boreal. (A). 19, 1–53 (1962).

Coe, W. R.: Resurgimiento de las poblaciones de invertebrados marinos del litoral y su dependencia de las corrientes oceánicas. Ecología 34, 225–229 (1953).

-: Ecología de la almeja frijol Donax gouldi en la costa del sur de California. Ecología 36 (3), 512–514 (1955).

-: Fluctuaciones en las poblaciones de invertebrados marinos litorales. J. mar. Res. 15 (3), 212–232 (1956).

- y [W. E. Allen: Crecimiento de organismos marinos sedentarios en bloques y placas experimentales durante nueve años consecutivos en el muelle de la Institución de Oceanografía Scripps. Toro. Scripps Instn Oceanogr. tecnología Ser. 4, 101–136 (1937).

- y [J. E. Fitch: Estudios de población, tasas de crecimiento local y reproducción de la almeja pismo (Tivela stultorum). J. mar. Res. 9, 188–210 (1950).

Crisp, D. J.: La difusión de Elminius modestus Darwin en el noroeste de Europa. J. mar. biol. Culo. REINO UNIDO. 37 (2), 483–520 (1958).

Dales, R. P.: La reproducción y el desarrollo larvario de Nereis diversicolor O. F. Müller. J. mar. biol. Culo. REINO UNIDO. 29 (2), 321–360 (1950).

-: Observaciones sobre la estructura y la historia de vida de Autolytus prolifer (O. F. Müller). J. mar. biol. Culo. REINO UNIDO. 30 (1), 119–128 (1951).

D'Asaro, C. N.: Cápsulas de huevos de moluscos prosobranquios del sur de Florida y las Bahamas y notas sobre el desove en el laboratorio. Toro. mar. Sci. 20 (2), 414–440 (1970a).

-: Cápsulas de huevo de algunos prosobranquios de la Costa Pacífica de Panamá. Veliger 13 (1), 37–43 (1970b).

Dean, D. y [H. H. Haskin: Repoblación bentónica del estuario del río Raritan tras la reducción de la contaminación. Limnol. Oceanogr. 9 (4), 551–563 (1964).

Dell, R. K.: Etapas en el desarrollo de la viviparidad en Amphineura. Naturaleza, Lond. 195 (4840), 513–514 (1962).

Dobkin, S.: Desarrollo larvario abreviado en camarones caridean y su importancia en el cultivo artificial de estos animales. F.A.O. Fish. Reps. 57, 935–946 (1969).

Dorsett, D. A.: La reproducción y mantenimiento de Polydora ciliata (Johnst.) En Whitstable. J. mar. biol. Culo. REINO UNIDO. 41 (2), 383–396 (1961).

Drapkin, E. I.: La influencia de Rapana bezoar Linne (Mollusca Muricidae) sobre la fauna del Mar Negro. [Russ.]. Dokl. Akad. Nauk SSSR 151 (3), 700–703 (1963).

Durchon, M.: Problèmes posés par le comportement des néréidiens au moment de leur reproduce. Année biol. 33 (1–2), 31–41 (1957).

- et J. C. Wissoq: Contribución al estudio de la estolonización chez les syllidiens (annélides polychètes). II. Autolytinae. Annls Sci. nat. (Zool). (Ser. 12e). 6 (1), 159–212 (1964).

Efford, I. E.: Reclutamiento de poblaciones marinas sedentarias como lo ejemplifica el cangrejo de arena, Emerita analoga (Decapoda, Hippidae). Crustaceana 18 (3), 293–308 (1970).

Einarsson, H.: Echinodermata. Zoología Islandia 4 (70), 1–67 (1948).

Elestheriou, A.: Notas sobre el poliqueto Pseudopolydora pulchra (Carazzi) de aguas británicas. Cah. Biol. mar. 11 (4), 459–474 (1970).

Ellis, D. V.: El bentos del fondo marino blando en el Ártico de América del Norte. Naturaleza, Lond. 184, 79–80 (1959).

-: Bentos infaunales marinos en el Ártico de América del Norte. Tech. Papilla. Arct. Inst. N. Am. 5, 1–53 (1960).

Elsey, C. R. y [D. H. Quayle: Distribución de larvas de ostras del desove de 1936 en Ladysmith Harbor. Prog. Rep. Pacif. biol. Stn Nanaimo 40, 8–10 (1939).

Estcourt, I. N.: La historia de vida y la biología reproductiva de Nicon aesturiensis Knox (Annelida, Polychaeta). Trans. R. Soc. NUEVA ZELANDA. 7 (13), 179–194 (1966).

Fischer-Piette, E.: Elminius modestus en Gironde. Toro. Mus. Hist. nat., París 38 (4), 451–454 (1966).

Fleming, C. A.: Historia cenozoica del Indo-Pacífico y otros elementos de agua cálida en los moluscos marinos de Nueva Zelanda. Venus, Kioto 25 (3–4), 105–117 (1967).

Gaevskaya, N. S. (Ed.): Claves de la fauna y la flora de los mares del norte de la URSS, [Russ.]. 740 págs. Moscú: Ciencia soviética 1948.

Ganaros, A.: Sobre el desarrollo de las primeras etapas de Urosalpinx cinera Decir a temperaturas constantes y su tolerancia a las bajas temperaturas. Biol. Toro. mar. biol. Laboratorio, Woods Hole 114 (2), 188–195 (1958).

Gee, J. M.: Sobre la taxonomía y distribución en Gales del Sur de Filograna, Hidroides y Mercierella (Polychaeta: Serpulidae). Ana. revista nat. Hist. (Ser. 13) 6 (72), 705–715 (1963).

George, J. D.: Diferencias de comportamiento entre las etapas larvarias de Cirriformia tentaculata (Montagu) de Drake's Island (Plymouth Sound) y de Southampton Water. Naturaleza, Lond. 199, pag. 195 (1963).

Giese, A. C.: Ciclos reproductivos anuales de invertebrados marinos. A. Rev. Physiol. 21, 547–576 (1959).

Giglioli, M. E. C.: Las masas de huevos de Naticidae (Gastropoda). J. Fish. Res. Bd Can. 12 (2), 287–327 (1955).

Gilpin-Brown, J. B.: La reproducción y el desarrollo larvario de Nereis fucata (Savigny). J. mar. biol. Culo. REINO UNIDO. 38 (1), 65–80 (1959).

Golikov, A. N. y [Ja. Starobogatov: ¿Cuál Rapana había penetrado en el Mar Negro. [Russ., Engl. Resumen]. Zool. Z h. 43 (9), 1397–1400 (1964).

Gordon, I.: Nota sobre el crustáceo decápodo de Stygiomedusa fabulosa Russell. Crustaceana 1 (2), 169–172 (1960).

Grainger, E. H.: El ciclo oceanográfico en Igloolik en el Ártico canadiense. 1. El zooplancton y las observaciones físicas y químicas. J. Fish. Res. Bd Can. 16 (4), 453–501 (1959).

-: Zooplancton de Fox Basin en el Ártico canadiense. J. Fish. Res. Bd Can. 19 (3), 377–400 (1962).

Greenwood, J. G.: El desarrollo larvario de Petrolisthes elongatus (H. Milne-Edwards) y Petrolisthes novazelandiae Filhol (Anomura, Porcellanidae) con notas de cría. Crustaceana 2 (3), 285–307 (1965).

Hadfield, M. G.: La biología de las larvas de nudibranquios. Oikos 14 (1), 85–95 (1963).

Hamond, R.: Aspectos de la biología de Autolytus alexandri Malmgren 1867 (Polychaeta, Syllidae). Cah. Biol. mar. 10 (1), 85–94 (1969).

Hannerz, L.: Desarrollo larvario de las familias Polychaeta Spionidae Sars, Disomidae Mesnil y Poecilochaetidae n. fam. en el fiordo de Gullmar (Suecia). Zool. Bidr. Upps. 31, 1–204 (1956).

Hansen, B.: Protección de cría en una holoturia de aguas profundas, Oneirophanta mutabilis Theel. Naturaleza, Lond. 217 (5133), 1062–1063 (1968).

Hesse, R., W. C. Allee y [K. P. Schmidt: Ecological animal geography, 2nd edit., 2nd print, 715 pp. Nueva York: John Wiley & amp Sons 1962.

Hill, M. B.: Los ciclos de vida y la tolerancia a la salinidad de los serpúlidos Mercierella enigmatica Fauvel y Hydroides uncinata Philippi en Lagos, Nigeria. J. Anim. Ecol. 36 (2), 303–321 (1967).

Hobson, K. D. y [B. H. Green: Reproducción asexual y sexual de Pygospio elegans (Polychaeta) en Barnstable Harbor, Massachusetts. Biol. Toro. mar. biol. Laboratorio, Woods Hole 135 (2), pág. 410 (1968).

Höisaeter, T.: Skenea nitens, Ammonicera rota, Odostomia lukisi y Eulimella nitidissima, pequeños gasterópodos marinos nuevos en la fauna noruega. Sarsia 31, 25–33 (1968).

Horsted, S.: Betragtninger sobre rejoproducktionen i Diskobugten. Grønland 5, 169–179 (1962).

Ingle, R. M. (Ed.): Revisión de los avances recientes en la investigación marina departamental. Especificaciones. científico Rep. Mar. Laboratorio. Fla 7, 1–13 (1963).

Ingle, R. M., B. Elred, H. W. Sims y [E. A. Elred: Sobre el posible origen caribeño de la población de langosta espinosa de Florida. Tech. Ser. Fla St. Bd Conserv. 40, 1–12 (1963).

Ivanov, A. I.: La extensión del área de distribución de Rapana bezoar L. y su penetración en la parte noroeste del Mar Negro. [Russ.]. Dokl. Akad. Nauk SSSR 141 (4), 991–993 (1961).

Jägersten, G.: Estudios sobre morfología, desarrollo larvario y biología de Protodrilus. Zool. Bidr. Upps. 29, 425–512 (1952).

Johansson, A. S.: Tøffelsneglen (Crepidula fornicata L.), et nytt element i norsk fauna. Fauna 16 (1), 16–22 (1963).

Johnson, M. W.: Estudios sobre plancton de los mares de Bering y Chukchi y áreas adyacentes. Proc. pan-Pacif. Sci. Congr. (No. 7). 4, 480–500 (1953).

Johnson, M. W.: Plancton de las áreas marinas de Beaufort y Chukchi del Ártico y su relación con la hidrografía. Tech. Papilla. Arct. Inst. N. Am. 1 (1956).

-: Observaciones sobre plancton costero recogidas durante el verano de 1957 en Point Barrow, Alaska. J. mar. Res. 17, 272–281 (1958).

-: Colecciones de zooplancton de la cuenca polar alta, con especial referencia a los copépodos. Limnol. Oceanogr. 8 (1), 89–102 (1963).

Jones, G. F.: Protección de la raza en tres especies del pelecípodo del sur de California Cardita. Wasmann J. Biol. 21 (2), 141–148 (1963).

Jouin, C.: Le developmentpement larvaire de Protodrilus chaetifer, Remane (archiannélides). C.r. Séanc. Acad. Sci., París 255 (22), 3065–3067 (1962).

-: Sexualité et biologie de la reproduce chez Mesonerilla Remane y Meganerilla Boaden (archiannélides Nerillidae). Cah. Biol. mar. 9 (1), 31–52 (1968).

Kenny, R.: Crecimiento y reproducción asexual de la estrella de mar Nepanthia belcheri (Perrier). Pacif. Sci. 23 (1), 51–55 (1969).

Kielhorn, W. V.: La biología del zooplancton de la zona de superficie de un área boreo-ártica del Océano Atlántico. J. Fish. Res. Bd Can. 9 (5), 223–264 (1952).

Kirkegaard, J. B.: Una investigación cuantitativa del centro Polychaeta del Mar del Norte. Spolia zool Mus. haun. 29, 1–285 (1969).

Knipovitch, N. M.: La hidrología de los mares y aguas salobres (aplicada a las pesquerías), [Russ.]. 513 págs. Moscú: Pyshepromisdat Press 1938.

Knudsen, J.: cápsulas de huevo y desarrollo de algunos prosobranquios marinos de África occidental tropical. Rep. Atlantide 1, 85–130 (1950).

-: El mar profundo Bivalvia. Scient. Representante John Murray Exped. 11 (3), 237–343 (1967).

-: La sistemática y biología de Bivalvia abisal y abisal. Rep. Galathea 11, 1–241 (1970).

Kohn, A. J.: Estudios sobre comportamiento de desove, masas de huevos y desarrollo larvario en el género gasterópodo Conus. I. Observaciones sobre nueve especies en Hawái. Pacif. Sci. 15 (2), 163-179 (1961a).

-: Estudios sobre comportamiento de desove, masas de huevos y desarrollo larvario en el género gasterópodo Conus. II. Observaciones en el Océano Índico durante la expedición Yale Seychelles. Toro. Bingham oceanogr. Coll. 17 (4), 3–51 (1961b).

Korringa, P.: Caída de larvas y semillas de ostras en Oosterschelde (Países Bajos) en 1960. Année biol. Contras. permanente. En t. Explor. Mer (1960). 17, 243–244 (1962).

Kudinova-Pasternak, R. K.: Algunas peculiaridades de la cría y el desarrollo en tres especies de la familia Teredinidae. [Russ.]. Dokl. Akad. Nauk. SSSR 117 (3), 530–532 (1957).

Lebour, M. V.: La cría de Littorina neritoides. J. mar. biol. Culo. REINO UNIDO. 20 (2), 373–378 (1935).

Lemche, H.: gasterópodos tectibranquios del norte y del Ártico. I.–II. K. danske Vidensk. Selsk. Skr. (Biol.) 5 (3), 1–136 (1948).

Lenderking, R. E.: Algunas observaciones recientes sobre la biología de Littorina angulifera Lam. de Biscayne y Virginia Keys, Florida. Toro. mar. Sci. Gulf Caribb 3 (4), 273–296 (1954).

Lewis, J. R. y [H. Tambs-Lyche: Littorina neritoides en Escandinavia. Sarsia 7, 7–10 (1962).

Linke, O.: Morphologie und Physiologie des Genitalapparates des Nordseelittorinen. Wiss. Meeresunters. (Abt. Helgoland) 19 (5), 1–60 (1933).

-: Beiträge zur Sexualbiologie der Littorinen. Z. Morph. Ökol. Tiere 28 (2), 170–177 (1934).

Ling, S. W.: La biología general y el desarrollo de Macrobrachium rosenbergii (De Man). FAO Fish. Reps. 57, 589–606 (1969).

Loosanoff, V. L. y [C. A. Nomejko: desove y cuajado de la ostra americana, O. virginica, en relación con las fases lunares. Ecología 32 (1), 113–134 (1951).

-: Intensidad relativa del calado de ostras en diferentes años en las mismas áreas de Long Island Sound. Biol. Toro. mar. biol. Laboratorio, Woods Hole 111 (3), 387–392 (1956).

Losovskaya, G. V. y [D. A. Nesterova: Sobre el desarrollo masivo de una forma de poliqueto, Polydora ciliata ssp. limicola Annenkova, nueva para la fauna del Mar Negro, en Suchoi Liman (parte noroeste del Mar Negro). [Russ., Resumen en inglés]. Zool. Z h. 43 (10), 1559–1560 (1964).

Lützen, J.: Las ascidias de Jørgen, Fiordo de Brønlund, norte de Groenlandia. Meddr Grønland 184 (7), 15–22 (1970).

Lysaght, A. M.: La biología y los trematodos parásitos del gasterópodo Littorina neritoides (L) en el rompeolas de Plymouth. J. mar. biol. Culo. REINO UNIDO. 25 (1), 41–80 (1941).

Lyster, F. H. J.: La tolerancia a la salinidad de las larvas de poliquetos. J. Anim. Ecol. 34 (3), 517–527 (1965).

MacGinitie, G. E.: Notas sobre la historia natural de algunos animales marinos. Soy. Leve. Nat. 19 (1), 207–218 (1938).

-: Distribución y ecología de los invertebrados marinos de Point Barrow, Alaska. Smithson. misc. Collns 128 (9), 1–201 (1955).

Madsen, F. J.: Sobre la zoogeografía y origen de la fauna abisal a la luz del conocimiento de los Porcellanasteridae. Rep. Galathea 4, 178–218 (1961).

Makarov, R.: Sobre el desarrollo larvario del género Esclerocraneno G. O. Sars (Caridea, Crangonidae). Crustaceana (Supl.) 15 (2), 27–37 (1968).

Marshall, N. B.: Aspectos de la biología del mar profundo, 380 págs. Londres: Hutchinson 1954.

Mayb, E.: Especiación geográfica en equinoides tropicales. Evolución, Lancaster, Pensilvania. 8 (1), 1–18 (1956).

Mesnil, F. et M. Caullery: Un niveau type de dimorphism évolutif chez une annélide polychaete (Spio martinensis Mesn. ). C. r. hebd. Séanc. Acad. Sci., París 165, 646–648 (1917).

Mileikovsky, S. A.: Interrelaciones entre larvas pelágicas de Nephthys ciliata (O. F. Müller), Macoma baltica Tierra Mya arenaria L. del Mar Blanco. [Russ., Engl. Resumen]. Zool. Z h. 38 (12), 1889–1891 (1959).

-: Carácter y naturaleza de las poblaciones de aguas profundas de formas bentónicas euribáticas de invertebrados con larvas pelágicas tomando como ejemplo el poliqueto Euphrosyne borealis Oersted 1843 desde el Atlántico Norte. [Russ.]. Okeanologija 1 (4), 679–687 (1961a). [Transl. Deep Sea Res. 9, 531–537 (1962)].

-: Algunos problemas sobre la ecología reproductiva de los invertebrados del fondo marino con desarrollo pelágico. [Russ.]. Trudy murmansk. biol. Inst. 3 (7), 147-169 (1961b). [Engl. transl .: Ministerio de Agricultura, Pesca y Alimentación, Transl. N.S., No. 8. Lowestoft, Inglaterra].

-: Distribución de poliquetos pelágicos en los mares de Noruega y de Barents. [Russ.]. Okeanologija 2 (6), 1060–1074 (1962).

Mileikovsky, S. A.: Larvas (principalmente de Polychaeta y Gastropoda) y ecología de desove de invertebrados de fondo marino con desarrollo pelágico en el ejemplo de los mares de Barents, Blanco y Noruego y la Corriente del Golfo. Tesis de doctorado, Instituto de Oceanología de la Academia de Ciencias de la URSS, Manuscrito, 2143 págs. 1965.

-: Dinámica estacional y diaria en larvas pelágicas de invertebrados del fondo de la plataforma marina en aguas cercanas a la costa de la bahía de Kandalaksha (Mar Blanco). Mar. Biol. 5, 180-194 (1970a).

-: Distribución de las larvas pelágicas de invertebrados de fondo en la región de Kurile-Kamchatka. [Russ.]. Trudy Inst. Okeanol. Akad. Nauk SSSR 86, 117-133 (1970b).

-: Reproducción y distribución larvaria del pterópodo Clione Limacina en los océanos Atlántico Norte, Subártico y Pacífico Norte. Mar. Biol. 6, 317–334 (1970c).

-: Influencia de la contaminación sobre las larvas pelágicas de invertebrados de fondo en aguas marinas cercanas a la costa y estuarinas. Mar. Biol. 6350–356 (1970d).

Millar, R. H.: Ascidiacea. Rep. Galathea 1, 189–209 (1959).

Miloslavskaya, N. M.: Nuevos moluscos de aguas cálidas en la fauna de East Murman. [Russ., Engl. Resumen.]. Zool. Z h. 37 (6), 939–941 (1953).

Monniot, F.: Interstitielles de Aseidies. Veröff. Inst. Meeresforsch. Bremerh. (Sdbd) 2, 161–164 (1966).

Mortensen, T.: Estudios del desarrollo y las formas larvarias de los equinodermos, 261 págs. Copenhague: G.E.C. Gad 1921.

Munro, J. L., A. C. Jones y [D. Dimitriou: Abundancia y distribución de las larvas del camarón rosado (Penaeus duorarum) en la plataforma Tortugas de Florida, agosto de 1962 a octubre de 1964. Fishery Bull. Fish Wildl. Serv. NOSOTROS. 67 (1), 165–181 (1968).

Natarajan, A. V.: Estudios sobre las masas de huevos y el desarrollo larvario de algunos prosobranquios del Golfo de Mannar y Palk Bay. Proc. Indian Acad. Sci. 46 (3), 170–228 (1957).

Nesis, K. N.: La cresta de las Islas Feroe como límite zoogeográfico para la fauna del fondo. [Russ.]. Dokl. Akad. Nauk SSSR 122 (6), 1011–1013 (1958).

-: Distribución de invertebrados del fondo boreal cerca de las costas de West Spitsbergen. [Russ.]. Dokl. Akad. Nauk SSSR 127 (3), 677–680 (1959).

North, W. J., M. Neushul y K. Glendenning: sucesivos cambios biológicos observados en una cala marina expuesta a un gran derrame de aceite mineral. Pollutions marines Micro-organismes et Product Petroleum Symposium, págs. 335–354. Mónaco 1964. París: 1965.

Ockelmann, W. K.: Marine Lamellibranchiata. La zoología del este de Groenlandia. Meddr Grønland 122 (4), 1–256 (1958).

-: Tipos de desarrollo en bivalvos marinos y su distribución a lo largo de la costa atlántica de Europa. Proc. Primer Congreso Europeo de Malacología. 1962, 25–35 (1965).

Paine, R. T.: Ecología del braquiópodo Glottidia pyramidata. Ecol. Monogr. 33 (3), 187–213 (1963).

Pearse, J. S.: Periodicidades reproductivas en varias poblaciones contrastantes de Odontaster validus Koehler, un asteroide antártico común. Biología de los mares antárticos. II. Antártida. Res. Ser. 5, 39–85 (1965).

-: Embriones y larvas demersales de desarrollo lento de la estrella de mar antártica Odontaster validus. Mar. Biol. 3, 110–116 (1969).

- y [A. C. Giese: alimentación, reproducción y constitución orgánica del equinoide antártico común Sterechinius neumayeri (Meisner). Biol. Toro. mar. biol. Laboratorio, Woods Hole 130 (3), 387–401 (1966).

Petrovskaya, M. N.: Sobre la ecología de los gusanos poliquetos de East Murman con algunos datos sobre sus períodos reproductivos y formas larvarias. [Russ.]. Trudy murmansk. biol. Inst. 1 (5), 28–67 (1960).

Polyansky, Yu. I.: Sobre la tolerancia de los embriones de algunos gasterópodos marinos a las bajas temperaturas. [Russ.]. Dokl. Akad. Nauk SSSR 77 (6), 1179–1182 (1950).

-: Tolerancia a temperaturas negativas en Moluscos litorales y sublitorales del Mar de Barents en la etapa embriológica de su desarrollo. Trudy murmansk. biol. Sta. 2, 17–31 (1955).

Potts, F. A.: Métodos de reproducción en el síllido. Ergebn. Fortschr. Zool. 3 (1), 1–72 (1911).

Potts, G. W.: La ecología de Onchidoris fusca (Nudibranchia). J. mar. biol. Culo. REINO UNIDO. 50 (2), 269–292 (1970).

Pyefinch, K. A.: Notas sobre la ecología de los organismos contaminantes de los buques. J. Anim. Ecol. 19 (1), 29–35 (1950).

Quayle, D. B.: Distribución de moluscos marinos introducidos en aguas de Columbia Británica. J. Fish. Res. Bd Can. 21 (5), 1155–1181 (1964).

-: Cultivo de ostras del Pacífico en Columbia Británica. Toro. Pez. Res. Bd Can. 169, 1–193 (1969).

Rajulu, G. S. y [N. Krishnan: Ocurrencia de reproducción asexual por gemación en Sipunculida. Naturaleza, Lond. 223, 186–187 (1969).

Rao, K. P.: Enteropneusta de la costa este de la India, con una nota sobre el curso probable de distribución de Ptychodera flava. Proc. Indian Acad. Sci. (B) 55, 224–232 (1962).

Rasmussen, E.: Notas fanísticas y biológicas sobre invertebrados marinos. II. Los huevos y las larvas de algunos gasterópodos marinos daneses. Vidensk. Meddr dansk naturh. Foren. 113, 201–249 (1951).

-: Reproducción asexual en Pygospio elegans Claparede (Polychaeta Sedentaria). Naturaleza, Lond. 171, pag. 1161 (1953).

-: Notas faunísticas y biológicas sobre invertebrados marinos. III. Reproducción y desarrollo larvario de algunos poliquetos del Isefjord, con algunas notas faunísticas. Biol. Meddr 23 (1), 1–84 (1956).

Raymont, J. E. G. y [B. G. A. Carrie: La producción de zooplancton en Southampton Water. En t. Revue ges. Hydrobiol. 49 (2), 185–232 (1964).

Rees, W. J.: La distribución de Pulpo vulgaris en aguas británicas. J. mar. biol. Culo. REINO UNIDO. 29, 361–378 (1950).

- y [J. R. Lumby: La abundancia de Pulpo en el Canal de la Mancha. J. mar. biol. Culo. REINO UNIDO. 33, 515–536 (1954).

Reish, D. J.: El efecto de las aguas de las refinerías de petróleo en los animales marinos bentónicos en el puerto de Los Ángeles, California. Pollutions marines Microorganismes et Product Petroleum Symposium, Mónaco 1964, págs. 355–361. París: 1965.

Remane, A.: Die Besiedlung des Sandbodens im Meere und die Bedeutung des Lebensformtypen für die Ökologie. Verh. dt. zool. Ges. (Wilhelmshaven) 327–339 (1952).

-: Die Biologischen Grenzen Meer-Süßwasser und Meer-Land. Geol. Rdsch. 47 (1), 465–471 (1958).

Remane, A.: Verschiedenheiten der Biologischen Entwicklung im Meer und Süßwasser. Veröff. Inst. Meeresforsch. Bremerh. (Sndbnd) 122-141 (1963).

Risbec, J.: Contribution à l'étude des nudibranches Néo-Calédoniens. Faune Colon. fr. 2, (1928).

Rice, M. E.: Un estudio comparativo del desarrollo de Phascolosoma agassizii, Golfingia pugettensis, y Themiste pyroides con una discusión de los patrones de desarrollo en Sipunculida. Ofelia 4 (2), 143–171 (1967).

-: Reproducción asexual en un gusano sipunculan. Science, N.Y. 167, 1618–1620 (1970).

Robertson, R.: Dispersión y desperdicio de larvas Philippia krebsii (Gastropoda: Architectonicidae) en el Atlántico Norte. Proc. Acad. nat. Sci. Filad. 116, 1–27 (1964).

-, R. S. Scheltema y [F. W. Adams: La alimentación, la dispersión larvaria y la metamorfosis de Filipenses (Gastropoda, Architectonicidae). Pacif. Sci. 26, 55–65 (1970).

Rullier, F.: La propagation de Mercierella enigmatica Fauvel (annélide polychète sédentaire) dans le monde entier en moins de einquante ans. Mém. soc. natn. sci. nat. Matemáticas. Cherburgo 51, 95–104 (1966).

Sanders, H. L. y [R. R. Hessler: Ecology of the deep-sea benthos. Science, N.Y. 163, 1419–1424 (1969).

Sandison, E. E.: El efecto de las fluctuaciones de salinidad en el ciclo de vida de Balanus pallidus stutsburi Darwin en el puerto de Lagos, Nigeria. J. Anim. Ecol. 35 (2), 363–378 (1966a).

-: El efecto de las fluctuaciones de salinidad en el ciclo de vida de Gryphaea gasar [(Adanson) Dautzenberg] en el puerto de Lagos, Nigeria. J. Anim. Ecol. 35 (2), 379–389 (1966b).

- y [M. B. Hill: La distribución de Balanus pallidus stutsburi Darwin, Gryphaea gasar [(Adanson) Dautzenberg], Mercierella enigmatica Fauvel y Hydroides uncinata (Philippi) en relación con la salinidad en el puerto de Lagos y arroyos adyacentes. J. Anim. Ecol. 35 (1), 235–250 (1966).

Scheltema, R. S.: Dispersión transatlántica de larvas de organismos bentónicos por medio de corrientes oceánicas. Tech. Papilla. Woods Hole oceanogr. Instn (Abstr para 1965). Milisegundo. (1965).

Scheltema, R. S.: Dispersión transatlántica de larvas veliger de moluscos bentónicos de bajíos. Trabajo presentado en el Second Int. Oceanogr. Congr., Moscú, 7 de junio de 1966. Manuscrito, 1966a.

-: Evidencia del transporte transatlántico de larvas de gasterópodos pertenecientes al género Cymatium. Deep Sea Res. 13 (1), 83–95 (1966b).

-: Dispersión de larvas por corrientes oceánicas ecuatoriales y su importancia para la zoogeografía de especies tropicales de aguas cardumenas. Naturaleza, Lond. 217, 1159–1162 (1968).

Scheltema, R. S. y J. R. Hall: Transporte transoceánico de larvas sipunculid pertenecientes al género Fascolosoma. Soy. Zool. 5 (2), Abstr No. 100 (1965).

Schoener, A.: Evidencia de periodicidad reproductiva en el mar profundo. Ecología 49, 81–87 (1968).

Segerstråle, S.: Investigaciones sobre las poblaciones bálticas de bivalvos Macoma baltica (L.). Parte I. Comentario. biol. 23 (2), 1–72 (1959).

Sellmer, G. P.: Morfología funcional e historia de vida ecológica de la almeja gema, Gemma gemma (Eulamellibranchia: Veneridae). Malacologia 5 (2), 137–223 (1967).

Sewell, R. B. S.: Observaciones sobre el crecimiento en ciertos Mollusca y sobre cambios correlacionados con el crecimiento en la rádula de Pyrozus palustra. Rec. Indian Mus. 26 (6), 529–548 (1924).

Sims, H. W., Jr. y [R. M. Ingle: Reclutamiento caribeño de la población de langostas espinosas de Florida. P. Jl Fla Acad. Sci. 29 (3), 207–242 (1966).

Smidt, E. L. B.: Los efectos de los inviernos helados en las faunas litorales marinas. Folia geogr. dan. 2 (3), 1–36 (1944).

Smith, R. I.: Sobre la ocurrencia de Nereis (Neanthus) succinea en la Estación Zoológica de Kristineberg, Suecia y su reciente expansión hacia el norte. Ark. Zool. 15 (5), 437–442 (1963).

Söderström, A.: Studien über die Polychaetenfamilie Spionidae, Disertación de inauguración, Uppsala: Almquist & amp Wiksell 1920.

Sokolova, M. N.: Algunas peculiaridades de la ecología de los invertebrados del fondo abisal. [Russ.]. En: Itogi Nauki, Dostizhenija Okeanologii, vol. 1. págs. 188–203. Moscú: Academia de Ciencias de la URSS Press 1959.

Spärck, R.: Sobre la ocurrencia de Crepidula fornicata (L.) en Limfjord. Rep. Dan. biol. Stn 40, 43–44 (1935).

-: Sobre la distribución de la zapatilla-lapa (Crepidula fornicata) en aguas danesas. Rep. Dan. biol. Stn 52, 47–50 (1950).

Stebbing, A. R. D.: Aspectos de la reproducción y el ciclo de vida de Rabdopleura compacta (Hemichordata). Mar. Biol. 5, 205–212 (1970).

Stepanova, V. S.: Distribución del agua del mar de Bering en el mar de Chukchi (sobre la base del análisis de las muestras de zooplancton del rompehielos “Krasin” en 1935). [Russ.]. Trudy arkt. Inst. nauchno-issled. 82, 113–144 (1937).

Stone, A. R.: crecimiento y reproducción de Hymeniacidon perleve (Montagu) (Porifera) en Langstone Harbour, Hampshire. J. Zool., Londres 161 (4), 443–459 (1970).

Streltzov, V. E.: Sobre la biología de la alimentación del poliqueto carnívoro Harmothoe imbricata (L.) en la Dalnezelenetzkaya Guba (Bahía) del Mar de Barents. [Russ.]. Trudy murmansk. biol. Inst. 11 (15), 115–121 (1966).

Stubbings, H. G. y [D. R. Houghton: La ecología de Chichester Harbour, S. Inglaterra, con especial referencia a algunas especies de incrustaciones. En t. Revue ges. Hydrobiol. 49 (2) 233–280 (1964).

Sveshnikov, V. A.: Biología de la reproducción y el desarrollo larvario de la Poliqueta del Mar Blanco, [Rusia], M / s 150 págs. Tesis doctoral, Universidad Estatal de Moscú, Cátedra de Zoología de Invertebrados 1959.

Swedmark, B.: La fauna intersticial de arena marina. Biol. Rvdo. 39, 1–42 (1964).

Tambs-Lyche, H.: Estudios zoogeográficos y faunísticos sobre animales marinos de Noruega occidental. Univ. Bergen Arb. (Naturv. Rekke) 7, 1–24 (1958).

Tattersall, W. M.: Notas sobre los hábitos de reproducción y la historia de vida del bígaro (Littorina). Scient. Invertir. Pez. Brch Ire. 1-11 (1920).

Theodor, J.: Contribution à l'étude des gorones (VII): écologie et comportement de la planula. Vie Milieu (A) 18 (2), 291–301 (1967).

Thomson, J. A.: Morfología y géneros de braquiópodos (reciente y terciario), Manual (27), 338 págs. Wellington, Nueva Zelanda: New Zealand Board of Science & amp Art 1927.

Thorson, G.: El desarrollo larvario, el crecimiento y el metabolismo de los invertebrados del fondo marino del Ártico en comparación con los de otros mares. Meddr Grønland 100 (6), 1–155 (1936).

-: Marine Gastropoda Prosobranchiata. Zoología Islandia 4 (60), 1–150 (1941).

-: Reproducción y desarrollo larvario de invertebrados marinos de fondo daneses, con especial referencia a las larvas planctónicas en el estrecho (Øresund). Meddr Kommn Danm. Fisk.-og Havunders. (Ser. Plancton) 4 (1), 1–529 (1946).

-: Ecología reproductiva y larvaria de invertebrados del fondo marino. Biol. Rvdo. 25 (1), 1–45 (1950).

Thorson, G.: Scaphopoda, Placophora, Solenogastres, Gastropoda Prosobranchiata, Lamellibranchiata. En: La expedición Godthaab, 1928. Meddr Grønland 81 (2), 1-177 (1951). Zur jetzigen Lage der marinen Bodentier-Ökologie. Verh. zool. Ges. Wilhelmshaven 1951, 270–327 (1952).

-: Comunidades de fondo (plataforma sublitoral o poco profunda). En: Tratado de ecología marina y paleoecología, Vol 1. pp 461–534. Ed. por J. W. Hedgpeth. Nueva York: Sociedad Geológica de América 1957.

-: Lucha y competición en el fondo marino. En: Undersea challenge, págs. 22–32 y 48–49. Londres: British Sub-Aqua Club 1963.

-: La distribución de mollusea marina bentónica a lo largo del N.E. Plataforma atlántica desde Gibraltar hasta Murmansk. Proc. Primer Congreso Europeo de Malacología. 1962, 5–25 (1965).

-: Algunos factores que influyen en el reclutamiento y establecimiento de comunidades bentónicas marinas. Neth. J. Sea Res. 3 (2), 267–293 (1966).

Tommasi, L. R.: Ophiuroidea de la Côte d'Ivoire. Toro. Inst. fr. Afr. negro (Ser. A) 29 (2), 521–583 (1967).

Ursin, E.: Una investigación cuantitativa de la fauna de equinodermos del Mar del Norte central. Meddr Kommn Danm. Fisk.-og Havunders. (N.S.) 2 (24), 1–204 (1960).

Walford, L. A.: Recursos vivos del mar. Oportunidades para la investigación y la expansión, 321 págs. Nueva York: Ronald Press Co. 1958.

Ward, J.: El ciclo de reproducción de la lapa de ojo de cerradura Fissurella barbadensis Gmelin. J. mar. Sci. 16 (4), 685–695 (1966).

Wells, H. W. y [L. E. Gray: ocurrencia estacional de Mytilus edulis de la costa de Carolina como resultado del transporte alrededor de Cabo Hatteras. Biol. Toro. mar. biol. Laboratorio, Woods Hole 119 (3), 550–559 (1960).

Werner, B.: Über die Anatomie, die Entwicklung und Biologie des Veliger und Veliconcha von Crepidula fornicata L. (Gastropoda, Prosobranchia). Helgoländer wiss. Meeresunters. 5, 169–217 (1955).

Wilson, D. P.: Larvas de Polydora ciliata Johnston y Polydora hoplura Claparede. J. mar. biol. Culo. REINO UNIDO. 15, 567–590 (1928).

Woodward, B. B.: Darwinismo y malacología. Proc. malac. Soc. Lond. 8, 272–286 (1909).

Woodwick, K. H.: Desarrollo temprano de Polydora nuchalis Woodwick, un poliqueto espiónido. Pacif. Sci. 14 (2), 122–128 (1960).

Zarenkov, N. A.: La revisión de los géneros Crangon fabricius y Esclerocraneno G.O. Sars (Decapoda, Crustacea). [Russ., Engl. Resumen]. Zool. Z h. 44 (12), 1761–1775 (1965).

Zenkevitoh, L. A.: Fauna y productividad biológica del mar, vol. 2. Los mares de la URSS, [Russ.], 588 págs. Moscú: Ciencia soviética 1947.

-: La biología de los mares de la URSS, [Russ.]. 740 págs. Moscú: Academia de Ciencias de la URSS Press 1963. (Edición en inglés - Londres: Allen & amp Unwin 1963).


Facultad Emérita

Dr. Charles Galt

Biología del zooplancton

Dr. Ju-Shey Ho

Biología de los copépodos parasitarios

Dr. Steven Manley

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WEB: Laboratorio Manley

Dr. Andrew Zed Mason

Ecotoxicología aplicada

Dr. Alan Miller

Ecología de invertebrados marinos

Dr. Donald Reish

Biología de poliquetos


Equipo de laboratorio de insectos Hay 21 productos.

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Los soportes Riker son soportes de exhibición de insectos y se pueden usar para exhibir mariposas y.

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Adecuado para clavar insectos, estos pasadores de acero revestidos de negro vienen en tres diferentes.

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Bloque de fijación de insectos 1 X 3 ''

Este es un bloque de fijación de estilo tradicional de tres pasos. Está hecho de madera dura con orificios para pasadores que se establecen en 23 mm, 12 mm y 7 mm. El bloque tiene una altura de 25 x 76 x 23 mm.

Este es un bloque de fijación de estilo tradicional de tres pasos. Está hecho de madera dura con alfiler.

Este es un bloque de fijación de estilo tradicional de tres pasos.Está hecho de madera dura con orificios para pasadores que se establecen en 23 mm, 12 mm y 7 mm. El bloque tiene una altura de 25 x 76 x 23 mm.

Caja de almacenamiento de insectos.

Esta caja de montaje de insectos es el lugar perfecto para almacenar insectos, ya que está hecha de cartón pesado, cubierto con papel negro en relieve y forrado para proteger los especímenes en su interior. Cuenta con bisagras niqueladas y el tablero de clavijas de 3/8 "está cubierto con espuma de espuma en la parte inferior de la caja. Las dimensiones son: 10 1/8 x 12 x 1 7/8"

Esta caja de montaje de insectos es el lugar perfecto para almacenar insectos, ya que está hecha de material pesado.

Esta caja de montaje de insectos es el lugar perfecto para almacenar insectos, ya que está hecha de cartón pesado, cubierto con papel negro en relieve y forrado para proteger las muestras.


10.1: Laboratorio de invertebrados I - Biología

Estudiando invertebrados de agua dulce desde 1984

Aquatic Biology Associates es el laboratorio independiente más antiguo del oeste de América del Norte que ofrece servicios de consultoría para invertebrados acuáticos.

Mary Jo Wevers, directora ejecutiva, ha trabajado como ecóloga acuática durante cuatro décadas. Robert Wisseman, científico principal, ha estado estrechamente involucrado en el desarrollo de protocolos de bioevaluación nacionales y estatales para evaluar la salud y la integridad de los ecosistemas de agua dulce.

El personal afable y conocedor de ABA, Inc., combinado con resultados de alta calidad y una interpretación transparente, hacen que volver a ABA año tras año con nuestras muestras de macroinvertebrados sea una elección fácil.

- Rachael Pecore, Colombia
Riverkeeper, Oregón

Transformando sus datos en información

Somos expertos en la identificación de macroinvertebrados de agua dulce, habiendo analizado más de 20.000 muestras de macroinvertebrados de arroyos, ríos, manantiales, humedales, estanques y lagos en todo el oeste de América del Norte.

Nuestros servicios técnicos incluyen muestreo de campo, estudios de especies de invertebrados en peligro de extinción y análisis cuantitativo de comunidades de macroinvertebrados y dietas de peces.

Proporcionamos análisis de datos estadísticos en una variedad de formatos, interpretación de resultados para satisfacer sus necesidades e informes preparados.

San Marino Environmental Associates ha utilizado ABA durante muchos años y ha descubierto que producen un trabajo preciso y de alta calidad de manera oportuna a precios razonables.

- Jonathan N. Baskin, Ph.D., Asociados ambientales de San Marino, California

Brindando atención personalizada a su proyecto

ABA sigue siendo un pequeño laboratorio por elección para brindar atención personalizada en todas las fases de su proyecto.

Ayudamos a aclarar los objetivos del proyecto y evaluar sus necesidades de datos para proporcionar resultados de calidad que sean rentables.

He trabajado con Mary Jo Wevers en ABA durante más de 25 años. Durante todo ese tiempo, ABA ha brindado un servicio excelente brindando procesamiento oportuno de muestras de macroinvertebrados acuáticos mientras yo era gerente de la sección de biomonitoreo del Departamento de Calidad Ambiental de Oregón, y por el trabajo que he realizado como consultor independiente. Ha sido un placer trabajar con Mary Jo y ABA y continuar brindando un excelente servicio y resultados.

- Rick Haefele
Departamento de Oregon de
Calidad ambiental (jubilado)


Ver el vídeo: ANIMALES INVERTEBRADOS. CienciasEducativas. (Noviembre 2022).