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¿Cómo se determina la longitud de un anélido?

¿Cómo se determina la longitud de un anélido?


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Actualmente estoy estudiando una sanguijuela de caballo y me gustaría saber si está completamente desarrollada o no. Cuando leo sobre diferentes especies de anélidos, a menudo se da una longitud máxima, así que me pregunto si hay alguna forma estándar de medir estos animales elásticos.

Por ejemplo, mi sanguijuela varía de 2 a 10 cm, pero a menudo parece preferir estirarse hasta unos 6 cm cuando no se mueve.

(Posiblemente debería modificar esta pregunta para que sea solo sobre sanguijuelas, pero también me pregunto acerca de las lombrices de tierra, y probablemente también de otras lombrices blandas y difíciles ...)


Sanguijuelas:

Según Taube (1966)$^1$:

Los adultos de sanguijuelas americanas oscilan entre 1/4 de pulgada y 12 pulgadas de contratado largo.

Debido a que las sanguijuelas pueden hincharse a más de 10 veces su tamaño "normal" después de una comida (y pueden sufrir hasta un 300% de cambio de longitud), parece que medir una sanguijuela en cualquier cosa que no sea su estado contraído conduciría a mediciones muy variables. . Por lo tanto, parece probable que solo el tamaño contraído resulte realmente útil.


Sin embargo, ver Klemm (1982)$^2$ (o Klemm, 1995 $^3$) para comentarios sobre la conservación preferida con fines de identificación:

[Las sanguijuelas] tienen un cuerpo blando y muy contráctil. Por lo tanto, si las sanguijuelas se dejan caer vivas en conservantes como el alcohol al 70% (etanol) ... se contraen fuertemente y, a veces, rasgos como los ojos, la forma general del cuerpo y los poros genitales se distorsionan y dificultan a los no especialistas y, en ocasiones, incluso a el experto para discernir. Cuando las sanguijuelas se anestesian adecuadamente antes de la fijación, suele haber menos contracción muscular. la forma del cuerpo permanece más uniforme y hay menos variabilidad de las estructuras anatómicas ... La sanguijuela conservada debe ser recta, moderadamente extendido y sin distorsiones.

  • Sin embargo, Klemm no usa la longitud del cuerpo como una característica de identificación en su clave y, por lo tanto, sus instrucciones parecen estar más preocupadas por preservar otras características anatómicas (no para asegurar mediciones de longitud precisas). Proporciona "tamaño promedio" para las especies en su clave, pero señala que "la contracción durante el procesamiento" puede provocar variaciones en la longitud medida.

Otros anélidos:

Curiosamente, naturewatch.ca proporciona las siguientes instrucciones para medir las lombrices de tierra:

1.Permita que el gusano se extienda libremente como si estuviera gateando.

2. Mida la distancia máxima que cubre la lombriz de tierra cuando está completamente estirada.

Del mismo modo, un Ph.D. disertación de Cynthia M. Hale (2004)$^4$ midió las lombrices de tierra preservándolas y luego

midiendo en el eje más largo del individuo enderezado.


Quitar:

Parece que casi siempre se proporcionan rangos de longitud corporal para cada especie. Aunque esto no es infrecuente para cualquier taxón, muchas fuentes (incluidas las citadas) mencionan que la variabilidad en los métodos de conservación / orientación corporal puede provocar variaciones en las longitudes registradas (al igual que la edad, la vitalidad, el contenido intestinal, el contenido de humedad, etc.). Klemm, en particular, sugiere utilizar numerosos especímenes de museo para sacar conclusiones sobre las especies debido a estos problemas de variabilidad.

Como resultado de estas discrepancias / inconsistencias, supongo que es mejor que cite una fuente de metodología (por ejemplo, Taube 1966) y explícitamente indicando sus métodos de medición.


Fuentes iluminadas:

[1] Taube, Clarence M. 1966. Leeches. Informe del Instituto de Investigación Pesquera No. 1713. http://quod.lib.umich.edu/f/fishery/AAG2862.1713.001?rgn=main;view=toc.

[2] Klemm, Donald J. 1982. Leeches (Annelida: Hirudinea) de América del Norte. EPA-600 / 3-82-025. Cincinnati, OH.

[3] Klemm, Donald J. 1995. Guía de identificación de sanguijuelas de agua dulce (Annelida: Hirudinea) de Florida y otros estados del sur. Departamento de Protección Ambiental de Florida. Tallahassee, FL. http://publicfiles.dep.state.fl.us/dear/labs/biology/biokeys/leeches.pdf

[4] Hale, Cynthia M. 2004 Consecuencias ecológicas de invasores exóticos: interacciones entre lombrices de tierra europeas y comunidades de plantas nativas en bosques de frondosas. Tesis doctoral. Universidad de Minnesota.


Los gusanos de sangre tienen un color rosa cremoso, ya que su piel pálida permite que se vean los fluidos corporales rojos que contienen hemoglobina. Este es el origen del nombre "gusano de sangre". En la "cabeza", los gusanos de sangre tienen cuatro pequeñas antenas y pequeñas proyecciones carnosas llamadas parapodios que corren por sus cuerpos. [1] [2] Los gusanos de sangre pueden crecer hasta 35 centímetros (14 pulgadas) de largo.

Los gusanos de sangre son carnívoros. Se alimentan extendiendo una gran probóscide que tiene cuatro mandíbulas huecas. Las mandíbulas están conectadas a glándulas que suministran veneno que utilizan para matar a sus presas, y su mordedura es dolorosa incluso para un humano. Son presas de otros gusanos, de peces, crustáceos y gaviotas que se alimentan del fondo.

La reproducción ocurre en pleno verano, cuando la temperatura del agua más cálida y el ciclo lunar, entre otros factores, desencadenan que los gusanos sexualmente maduros se transformen en una etapa de no alimentación llamada epitoque. Con parapodios agrandados, nadan hasta la superficie del agua donde ambos sexos liberan gametos y luego mueren.

La primera etapa en muchas formas de lombriz de sangre es una etapa zooplanctónica seguida por el estadio bentónico donde las larvas rojas segmentadas familiares se desarrollan protegidas por tubos de seda hechos en el limo del fondo. Estas larvas progresan desde pequeños gusanos opacos pálidos hasta larvas rojas más grandes de 3 a 10 centímetros de longitud o más durante un período tan corto como 2-3 semanas en condiciones óptimas. [3]

Estos animales son únicos porque contienen mucho cobre sin ser envenenados. Sus mandíbulas son inusualmente fuertes ya que también contienen el metal en forma de un biomineral de cloruro a base de cobre, conocido como atacamita, [4] en forma cristalina. [5] Se teoriza que este cobre se utiliza como catalizador para su mordedura venenosa.

Glycera es el género tipo de la familia Glyceridae. Contiene las siguientes especies: [6]

  • Glycera abranchiata
  • Glycera alba
  • Glycera amadaiba
  • Glycera amboinensis
  • Glycera americana
  • Glycera asimétrica
  • Glycera baltica
  • Glycera bassensis
  • Glycera benguellana
  • Glycera benhami
  • Glycera branchiopoda
  • Glycera brevicirris
  • Glycera calbuconensis
  • Glycera capitata
  • Glycera carnea
  • Glycera celtica
  • Glycera chirori
  • Glycera cinnamomea
  • Glycera convoluta
  • Glycera dayi
  • Glycera decipiens
  • Glycera dentribranchia
  • Glycera derbyensis
  • Glycera dibranchiata
  • Glycera dubia
  • Glycera edwardsi
  • Glycera ehlersi
  • Glycera embranchiata
  • Epipolasis de gliceras
  • Glycera fundicola
  • Glycera fusiformis
  • Glycera gigantea
  • Glycera gilbertae
  • Glycera glaucopsammensis
  • Glycera guatemalensis
  • Glycera guinensis
  • Glycera hasidatensis
  • Glycera heteropoda
  • Glycera incerta
  • Glycera kerguelensis
  • Glycera knoxi
  • Glycera lamelliformis
  • Glycera lamellipodia
  • Glycera lancadivae
  • Glycera lapidum
  • Glycera longipinnis
  • Glycera longissima
  • Glycera macintoshi
  • Glycera madagascariensis
  • Glycera manorae
  • Glycera martensii
  • Glycera mauritiana
  • Glycera micrognatha
  • Glycera mimica
  • Glycera minor
  • Glycera minuta
  • Glycera nana
  • Glycera natalensis
  • Glycera nicobarica
  • Glycera nigripes
  • Glycera onomichiensis
  • Glycera orientalis
  • Glycera oxycephala
  • Glycera pacifica
  • Glycera papillosa
  • Glycera pilicae
  • Glycera polygona
  • Glycera posterobranchia
  • Glycera prashadi
  • Glycera profundi
  • Glycera prosobranchia
  • Glycera pseudorobusta
  • Glycera robusta
  • Glycera rouxi
  • Glycera russa
  • Glycera rutilans
  • Espádice de Glycera
  • Glycera sphyrabrancha
  • Glycera subaenea
  • Glycera taprobanensis
  • Glycera taurica
  • Glycera tenuis
  • Glycera tesselata
  • Glycera unicornis

Glycera Los gusanos se venden comercialmente en tiendas de aparejos como cebo para la pesca en agua salada. [7]

  1. ^Chien PK, Rice MA (1985). "Localización autorradiográfica de aminoácidos suministrados exógenamente después de la absorción por el poliqueto, Glycera dibranchiata Ehlers ". Revista Wasmann de Biología. 43: 60–71. ISSN0043-0927. OCLC6322423.
  2. ^
  3. Qafaiti M, Stephens GC (1988). "Distribución de aminoácidos en los tejidos internos después de la captación epidérmica en el anélido Glycera dibranchiata"(PDF). Revista de biología experimental. 136 (1): 177–191.
  4. ^
  5. "Gusano de sangre: Usos y aplicaciones como cebo de pesca". Archivado desde el original el 15 de marzo de 2013. Consultado el 3 de diciembre de 2012.
  6. ^
  7. Lichtenegger HC, Schöberl T, Bartl MH, Waite H, Stucky GD (octubre de 2002). "Alta resistencia a la abrasión con escasa mineralización: cobre biomineral en mandíbulas de gusano". Ciencias. 298 (5592): 389–92. doi: 10.1126 / science.1075433. PMID12376695. S2CID14001250.
  8. ^
  9. Lichtenegger HC, Schöberl T, Ruokolainen JT, et al. (Agosto de 2003). "Zinc y destreza mecánica en las fauces de Nereis, un gusano marino". Proc. Natl. Acad. Sci. ESTADOS UNIDOS. 100 (16): 9144–9. doi: 10.1073 / pnas.1632658100. PMC170886. PMID12886017.
  10. ^ Fauchald, K. Bellan, G. (2009). Glycera Savigny, 1818. En: Fauchald, K. (Ed) (2009). Base de datos mundial de Polychaeta. Consultado a través del Registro Mundial de Especies Marinas en http://www.marinespecies.org/aphia.php?p=taxdetails&id=129296 el 2009-03-12.
  11. ^
  12. WHITTLE, PATRICK (27 de abril de 2017). "Abating Bait: Disminución de gusanos preciados amenaza la forma de vida". Noticias de EE. UU.. Archivado desde el original el 21 de abril de 2018.

Estudio "Pesca de alérgenos: asma inducida por lombrices de sangre" en el centro de alergia, asma e inmunología clínica (AACI) [1]


Contenido

Hay más de 22.000 especies de anélidos vivos, [5] [6] que varían en tamaño desde microscópicos hasta la lombriz gigante australiana Gippsland y Amynthas mekongianus (Cognetti, 1922), que pueden crecer hasta 3 metros (9,8 pies) de largo. [6] [7] [8] Aunque la investigación desde 1997 ha cambiado radicalmente las opiniones de los científicos sobre el árbol genealógico evolutivo de los anélidos, [9] [10] la mayoría de los libros de texto utilizan la clasificación tradicional en los siguientes subgrupos: [7] [11]

    (alrededor de 12.000 especies [5]). Como sugiere su nombre, tienen múltiples chetae ("pelos") por segmento. Los poliquetos tienen parapodios que funcionan como miembros y órganos de la nuca que se cree que son quimiosensores. [7] La ​​mayoría son animales marinos, aunque algunas especies viven en agua dulce y menos aún en tierra. [12]
    (alrededor de 10.000 especies [6]). Estos tienen pocas o ninguna queta por segmento, y no tienen órganos nucales ni parapodios. Sin embargo, tienen un órgano reproductor único, el clitellum en forma de anillo ("silla de montar") alrededor de sus cuerpos, que produce un capullo que almacena y nutre los huevos fertilizados hasta que eclosionan [11] [13] o, en los moniligastridos, huevos con yemas. que proporcionan nutrición a los embriones. [6] Los clitellates se subdividen en: [7]
      ("con pocos pelos"), que incluye lombrices de tierra. Los oligoquetos tienen una almohadilla pegajosa en el techo de la boca. [7] La ​​mayoría son excavadoras que se alimentan de materiales orgánicos total o parcialmente descompuestos. [12], cuyo nombre significa "en forma de sanguijuela" y cuyos miembros más conocidos son sanguijuelas. [7] Las especies marinas son en su mayoría parásitos chupadores de sangre, principalmente de peces, mientras que la mayoría de las especies de agua dulce son depredadores. [12] Tienen ventosas en ambos extremos del cuerpo y las usan para moverse como gusanos pulg. [14]

    Los Archiannelida, diminutos anélidos que viven en los espacios entre los granos de sedimento marino, fueron tratados como una clase separada debido a su estructura corporal simple, pero ahora se los considera poliquetos. [11] Algunos otros grupos de animales se han clasificado de diversas formas, pero ahora se los considera ampliamente como anélidos:

    • Pogonophora / Siboglinidae se descubrieron por primera vez en 1914, y su falta de un intestino reconocible hizo difícil clasificarlos. Se han clasificado como un phylum separado, Pogonophora, o como dos phyla, Pogonophora y Vestimentifera. Más recientemente se han reclasificado como una familia, Siboglinidae, dentro de los poliquetos. [12] [15]
    • Los Echiura tienen una historia taxonómica accidentada: en el siglo XIX fueron asignados al filo "Gephyrea", que ahora está vacío ya que sus miembros han sido asignados a otros phyla los Echiura fueron considerados anélidos hasta la década de 1940, cuando fueron clasificados como un filo por derecho propio, pero un análisis filogenético molecular en 1997 concluyó que los echiuranos son anélidos. [5] [15] [16] viven de crinoideos y otros equinodermos, principalmente como parásitos. En el pasado se los consideraba parientes cercanos de los gusanos planos trematodos o de los tardígrados, pero en 1998 se sugirió que eran un subgrupo de poliquetos. [12] Sin embargo, otro análisis en 2002 sugirió que los mizostómidos están más estrechamente relacionados con los gusanos planos o con los rotíferos y acantocéfalos. [15] se clasificó originalmente como anélidos, a pesar de la completa falta de segmentación, cerdas y otros caracteres anélidos. El phylum Sipuncula se alió más tarde con el Mollusca, principalmente sobre la base de caracteres larvarios y de desarrollo. Los análisis filogenéticos basados ​​en 79 proteínas ribosomales indicaron una posición de Sipuncula dentro de Annelida. [17] El análisis posterior del ADN de la mitocondria ha confirmado su estrecha relación con Myzostomida y Annelida (incluidos los echiurans y pogonophorans). [18] También se ha demostrado que una segmentación neural rudimentaria similar a la de los anélidos ocurre en la etapa larvaria temprana, incluso si estos rasgos están ausentes en los adultos. [19]

    Ninguna característica única distingue a los anélidos de otros filos de invertebrados, pero tienen una combinación distintiva de características. Sus cuerpos son largos, con segmentos divididos externamente por constricciones anulares poco profundas llamadas anillos e internamente por septos ("particiones") en los mismos puntos, aunque en algunas especies los septos están incompletos y en algunos casos faltan. La mayoría de los segmentos contienen los mismos conjuntos de órganos, aunque compartir un intestino, un sistema circulatorio y un sistema nervioso comunes los hace interdependientes. [7] [11] Sus cuerpos están cubiertos por una cutícula (cubierta exterior) que no contiene células pero es secretada por células en la piel debajo, está hecha de colágeno duro pero flexible [7] y no muda [20] - por otro lado, las cutículas de los artrópodos están hechas de α-quitina más rígida, [7] [21] y mudan hasta que los artrópodos alcanzan su tamaño completo. [22] La mayoría de los anélidos tienen sistemas circulatorios cerrados, donde la sangre hace su circuito completo a través de los vasos sanguíneos. [20]

    Resumen de características distintivas
    Annelida [7] Recientemente fusionado en Annelida [9] Estrechamente relacionada Filos de aspecto similar
    Echiura [23] Sipúncula [24] Nemertea [25] Artrópodos [26] Onychophora [27]
    Segmentación externa no no Solo en unas pocas especies Si, excepto en ácaros no
    Repetición de órganos internos. no no En formas primitivas
    Septa entre segmentos En la mayoría de las especies no no no no no
    Material de la cutícula colágeno colágeno colágeno ninguno α-quitina α-quitina
    Muda Generalmente no [20], pero algunos poliquetos mudan sus mandíbulas y las sanguijuelas mudan sus pieles [28] no [29] no [29] no [29] Sí [22]
    Cavidad corporal Celoma, pero esto está reducido o falta en muchas sanguijuelas y algunos poliquetos pequeños [20] dos celomas, principal y en probóscide dos celomas, principal y en tentáculos Celoma solo en probóscide Hemocele Hemocele
    Sistema circulatorio Cerrado en la mayoría de las especies Salida abierta, retorno por vena ramificada Abierto Cerrado Abierto Abierto

    Segmentación Editar

    La mayor parte del cuerpo de un anélido consta de segmentos que son prácticamente idénticos, que tienen los mismos conjuntos de órganos internos y chaetae externos (del griego χαιτη, que significa "cabello") y, en algunas especies, apéndices. Las secciones más adelante y atrás no se consideran segmentos verdaderos ya que no contienen los conjuntos estándar de órganos y no se desarrollan de la misma manera que los segmentos verdaderos. La sección más delantera, llamada prostomium (del griego προ- que significa "delante de" y στομα que significa "boca") contiene el cerebro y los órganos de los sentidos, mientras que la parte trasera, llamada pygidium (en griego πυγιδιον, que significa "pequeña cola") o periproct contiene el ano, generalmente en la parte inferior. La primera sección detrás del prostomium, llamada peristomium (en griego περι- que significa "alrededor" y στομα que significa "boca"), es considerada por algunos zoólogos como un segmento no verdadero, pero en algunos poliquetos el peristomium tiene chetas y apéndices como los de otros segmentos. [7]

    Los segmentos se desarrollan uno a la vez a partir de una zona de crecimiento justo por delante del pigidio, de modo que el segmento más joven de un anélido está justo enfrente de la zona de crecimiento mientras que el peristomio es el más antiguo. Este patrón se llama crecimiento teloblástico. [7] Algunos grupos de anélidos, incluidas todas las sanguijuelas, [14] tienen un número máximo fijo de segmentos, mientras que otros agregan segmentos a lo largo de sus vidas. [11]

    El nombre del filo se deriva de la palabra latina annelus, que significa "anillo pequeño". [5]

    Muro corporal, chaetae y parapodia Editar

    Las cutículas de los anélidos están hechas de fibras de colágeno, generalmente en capas que giran en espiral en direcciones alternas para que las fibras se crucen entre sí. Estos son secretados por la epidermis profunda unicelular (capa más externa de la piel). Algunos anélidos marinos que viven en trompas carecen de cutículas, pero sus trompas tienen una estructura similar y las glándulas secretoras de moco de la epidermis protegen su piel. [7] Debajo de la epidermis está la dermis, que está hecha de tejido conectivo, en otras palabras, una combinación de células y materiales no celulares como el colágeno. Debajo hay dos capas de músculos, que se desarrollan a partir del revestimiento del celoma (cavidad corporal): los músculos circulares hacen un segmento más largo y delgado cuando se contraen, mientras que debajo de ellos hay músculos longitudinales, generalmente cuatro tiras distintas, [20] cuyas contracciones hacer el segmento más corto y más gordo. [7] Algunos anélidos también tienen músculos internos oblicuos que conectan la parte inferior del cuerpo con cada lado. [20]

    Las setas ("pelos") de los anélidos se proyectan desde la epidermis para proporcionar tracción y otras capacidades. Los más simples no están articulados y forman paquetes emparejados cerca de la parte superior e inferior de cada lado de cada segmento. Los parapodios ("extremidades") de los anélidos que los tienen a menudo tienen chetas más complejas en sus puntas, por ejemplo, articuladas, en forma de peine o en forma de gancho. [7] Los chetae están hechos de β-quitina moderadamente flexible y están formados por folículos, cada uno de los cuales tiene una célula quetoblasto ("formadora de pelo") en la parte inferior y músculos que pueden extender o retraer el cheta. Los quetoblastos producen quetas mediante la formación de microvellosidades, finas extensiones similares a pelos que aumentan el área disponible para secretar las quetas. Cuando se completa la cheta, las microvellosidades se retiran hacia el quetoblasto, dejando túneles paralelos que recorren casi toda la longitud de la cheta. [7] Por lo tanto, las quetas de los anélidos son estructuralmente diferentes de las setas ("cerdas") de los artrópodos, que están hechas de la α-quitina más rígida, tienen una sola cavidad interna y están montadas en juntas flexibles en hoyos poco profundos en la cutícula. . [7]

    Casi todos los poliquetos tienen parapodios que funcionan como extremidades, mientras que otros grupos importantes de anélidos carecen de ellos. Los parapodios son extensiones pares no articuladas de la pared del cuerpo y sus músculos se derivan de los músculos circulares del cuerpo. A menudo están sostenidos internamente por una o más chetas grandes y gruesas. Los parapodios de poliquetos que viven en madrigueras y tubos son a menudo solo crestas cuyas puntas llevan chetas en forma de gancho. En rastreadores y nadadores activos, los parapodios a menudo se dividen en grandes remos superiores e inferiores sobre un tronco muy corto, y los remos generalmente están bordeados de quetas y, a veces, de cirros (haces fusionados de cilios) y branquias. [20]

    Sistema nervioso y sentidos Editar

    El cerebro generalmente forma un anillo alrededor de la faringe (garganta), que consta de un par de ganglios (centros de control local) por encima y por delante de la faringe, unidos por cordones nerviosos a ambos lados de la faringe a otro par de ganglios justo debajo y detrás. eso. [7] Los cerebros de los poliquetos se encuentran generalmente en el prostomio, mientras que los de los clitelatos se encuentran en el peristomio o, a veces, en el primer segmento detrás del prostomio. [30] En algunos poliquetos muy móviles y activos, el cerebro está agrandado y es más complejo, con secciones visibles del rombencéfalo, el mesencéfalo y el prosencéfalo. [20] El resto del sistema nervioso central, el cordón nervioso ventral, es generalmente "en forma de escalera", que consiste en un par de cordones nerviosos que atraviesan la parte inferior del cuerpo y tienen en cada segmento ganglios emparejados unidos por un conexión transversal. Desde cada ganglio segmentario, un sistema ramificado de nervios locales corre hacia la pared del cuerpo y luego rodea el cuerpo. [7] Sin embargo, en la mayoría de los poliquetos, los dos cordones nerviosos principales están fusionados, y en el género tubular Owenia el cordón de un solo nervio no tiene ganglios y está ubicado en la epidermis. [11] [31]

    Al igual que en los artrópodos, cada fibra muscular (célula) está controlada por más de una neurona, y la velocidad y la potencia de las contracciones de la fibra dependen de los efectos combinados de todas sus neuronas. Los vertebrados tienen un sistema diferente, en el que una neurona controla un grupo de fibras musculares. [7] La ​​mayoría de los troncos nerviosos longitudinales de los anélidos incluyen axones gigantes (las líneas de señal de salida de las células nerviosas). Su gran diámetro disminuye su resistencia, lo que les permite transmitir señales excepcionalmente rápido. Esto permite que estos gusanos se retiren rápidamente del peligro acortando sus cuerpos. Los experimentos han demostrado que cortar los axones gigantes previene esta respuesta de escape pero no afecta el movimiento normal. [7]

    Los sensores son principalmente células individuales que detectan luz, sustancias químicas, ondas de presión y contacto, y están presentes en la cabeza, apéndices (si los hay) y otras partes del cuerpo. [7] Los órganos nucales ("en el cuello") son estructuras ciliadas emparejadas que se encuentran sólo en los poliquetos y se cree que son quimiosensores. [20] Algunos poliquetos también tienen varias combinaciones de ocelos ("ojos pequeños") que detectan la dirección de la que proviene la luz y ojos de cámara u ojos compuestos que probablemente pueden formar imágenes. [31] Los ojos compuestos probablemente evolucionaron independientemente de los ojos de los artrópodos. [20] Algunos gusanos de tubo utilizan ocelos ampliamente distribuidos por sus cuerpos para detectar las sombras de los peces, de modo que puedan retirarse rápidamente a sus tubos. [31] Algunos poliquetos que viven en madrigueras y tubos tienen estatocistos (sensores de inclinación y equilibrio) que les indican en qué dirección se baja. [31] Algunos géneros de poliquetos tienen en la parte inferior de la cabeza palpos que se utilizan tanto para alimentarse como como "palpadores", y algunos de estos también tienen antenas que son estructuralmente similares pero probablemente se utilizan principalmente como "palpadores". [20]

    Celoma, locomoción y sistema circulatorio Editar

    La mayoría de los anélidos tienen un par de celomas (cavidades corporales) en cada segmento, separados de otros segmentos por tabiques y entre sí por mesenterios verticales. Cada tabique forma un sándwich con tejido conectivo en el medio y mesotelio (membrana que sirve como revestimiento) de los segmentos anteriores y siguientes a cada lado. Cada mesenterio es similar, excepto que el mesotelio es el revestimiento de cada uno de los pares de celomas, y los vasos sanguíneos y, en los poliquetos, los principales cordones nerviosos están incrustados en él. [7] El mesotelio está formado por células epiteliomusculares modificadas [7] en otras palabras, sus cuerpos forman parte del epitelio pero sus bases se extienden para formar fibras musculares en la pared corporal. [32] El mesotelio también puede formar músculos circulares y radiales en los tabiques y músculos circulares alrededor de los vasos sanguíneos y el intestino. Partes del mesotelio, especialmente en el exterior del intestino, también pueden formar células cloragogénicas que realizan funciones similares a las del hígado de los vertebrados: producir y almacenar glucógeno y grasa producir la hemoglobina transportadora de oxígeno que descompone las proteínas y convierte los productos de desecho nitrogenados en amoníaco y urea que se excreta. [7]

    Muchos anélidos se mueven por peristalsis (ondas de contracción y expansión que recorren el cuerpo), [7] o flexionan el cuerpo mientras usan parapodios para gatear o nadar. [33] En estos animales, los tabiques permiten que los músculos circulares y longitudinales cambien la forma de los segmentos individuales, haciendo de cada segmento un "globo" lleno de líquido por separado. [7] Sin embargo, los septos suelen estar incompletos en los anélidos que son semisésiles o que no se mueven por peristaltismo o por movimientos de parapodios; por ejemplo, algunos se mueven mediante movimientos de latigazos del cuerpo, algunas pequeñas especies marinas se mueven por medio de cilios. (pelos finos potenciados por los músculos) y algunos excavadores giran sus faringe (gargantas) del revés para penetrar en el fondo del mar y arrastrarse hacia él. [7]

    El líquido de los celomas contiene células de celomocitos que defienden a los animales contra parásitos e infecciones. En algunas especies, los celomocitos también pueden contener un pigmento respiratorio - hemoglobina roja en algunas especies, clorocruorina verde en otras (disuelta en el plasma) [20] - y proporcionar transporte de oxígeno dentro de sus segmentos. El pigmento respiratorio también se disuelve en el plasma sanguíneo. Las especies con septos bien desarrollados generalmente también tienen vasos sanguíneos que recorren todo el cuerpo por encima y por debajo del intestino, el superior transporta sangre hacia adelante mientras que el inferior la transporta hacia atrás. Las redes de capilares en la pared del cuerpo y alrededor del intestino transfieren sangre entre los vasos sanguíneos principales y las partes del segmento que necesitan oxígeno y nutrientes. Ambos vasos principales, especialmente el superior, pueden bombear sangre al contraerse. En algunos anélidos, el extremo delantero del vaso sanguíneo superior se agranda con músculos para formar un corazón, mientras que en los extremos delanteros de muchas lombrices de tierra algunos de los vasos que conectan los vasos principales superiores e inferiores funcionan como corazones. Las especies con septos poco desarrollados o sin septos generalmente no tienen vasos sanguíneos y dependen de la circulación dentro del celoma para suministrar nutrientes y oxígeno. [7]

    Sin embargo, las sanguijuelas y sus parientes más cercanos tienen una estructura corporal muy uniforme dentro del grupo pero significativamente diferente de la de otros anélidos, incluidos otros miembros de la Clitellata. [14] En las sanguijuelas no hay septos, la capa de tejido conectivo de la pared del cuerpo es tan gruesa que ocupa gran parte del cuerpo, y los dos celomas están muy separados y corren a lo largo del cuerpo. Funcionan como los vasos sanguíneos principales, aunque están uno al lado del otro en lugar de superior e inferior. Sin embargo, están revestidos de mesotelio, como los celomas y a diferencia de los vasos sanguíneos de otros anélidos. Las sanguijuelas generalmente usan ventosas en sus extremos delantero y trasero para moverse como gusanos pulg. El ano está en la superficie superior del pigidio. [14]

    Respiración editar

    En algunos anélidos, incluidas las lombrices de tierra, toda la respiración se realiza a través de la piel. Sin embargo, muchos poliquetos y algunos clitelatos (el grupo al que pertenecen las lombrices de tierra) tienen branquias asociadas con la mayoría de los segmentos, a menudo como extensiones de los parapodios en los poliquetos. Las branquias de los habitantes de los tubos y de los excavadores generalmente se agrupan alrededor del extremo que tenga el flujo de agua más fuerte. [20]

    Alimentación y excreción Editar

    Las estructuras de alimentación en la región de la boca varían ampliamente y tienen poca correlación con la dieta de los animales. Muchos poliquetos tienen una faringe muscular que puede evertirse (voltearse del revés para extenderla). En estos animales, los primeros segmentos a menudo carecen de tabiques, de modo que, cuando los músculos de estos segmentos se contraen, el fuerte aumento de la presión del líquido de todos estos segmentos evierte la faringe muy rápidamente. Dos familias, Eunicidae y Phyllodocidae, han desarrollado mandíbulas, que pueden usarse para capturar presas, morder trozos de vegetación o agarrar materia muerta y en descomposición. Por otro lado, algunos poliquetos depredadores no tienen mandíbulas ni faringe eversible. Los alimentadores de depósitos selectivos generalmente viven en tubos en el fondo del mar y usan palpos para encontrar partículas de alimento en el sedimento y luego se las limpian en la boca. Los filtradores utilizan "coronas" de palpos cubiertos de cilios que lavan las partículas de comida hacia la boca. Los alimentadores de depósitos no selectivos ingieren el suelo o los sedimentos marinos a través de bocas que generalmente no están especializadas. Algunos clitellates tienen almohadillas pegajosas en el techo de la boca, y algunas de estas pueden evertir las almohadillas para capturar presas. Las sanguijuelas suelen tener una trompa eversible o una faringe muscular con dos o tres dientes. [20]

    El intestino es generalmente un tubo casi recto sostenido por los mesenterios (particiones verticales dentro de los segmentos) y termina con el ano en la parte inferior del pigidio. [7] Sin embargo, en los miembros de la familia Siboglinidae que viven en tubos, el intestino está bloqueado por un revestimiento hinchado que alberga bacterias simbióticas, que pueden representar el 15% del peso total de los gusanos. Las bacterias convierten la materia inorgánica, como el sulfuro de hidrógeno y el dióxido de carbono de los respiraderos hidrotermales o el metano de las filtraciones, en materia orgánica que se alimenta a sí mismos y a sus huéspedes, mientras que los gusanos extienden sus palpos hacia los flujos de gas para absorber los gases que necesitan las bacterias. . [20]

    Los anélidos con vasos sanguíneos usan metanefridia para eliminar los productos de desecho solubles, mientras que los que no tienen protonefridia. [7] Ambos sistemas utilizan un proceso de filtración de dos etapas, en el que los fluidos y los productos de desecho se extraen primero y estos se filtran nuevamente para reabsorber cualquier material reutilizable mientras se vierten los materiales tóxicos y gastados en forma de orina. La diferencia es que la protonefridia combina ambas etapas de filtración en el mismo órgano, mientras que la metanefridia realiza solo la segunda filtración y depende de otros mecanismos para la primera: en los anélidos, las células filtrantes especiales en las paredes de los vasos sanguíneos permiten que los fluidos y otras moléculas pequeñas pasen al interior. el líquido celómico, donde circula hacia la metanefridia. [34] En los anélidos, los puntos en los que el líquido entra en la protonefridia o metanefridia se encuentran en el lado delantero de un tabique, mientras que el filtro de segunda etapa y el nefridioporo (abertura de salida en la pared del cuerpo) se encuentran en el siguiente segmento. Como resultado, el último segmento (antes de la zona de crecimiento y pigidio) no tiene estructura que extraiga sus desechos, ya que no hay un segmento siguiente para filtrarlos y descargarlos, mientras que el primer segmento contiene una estructura de extracción que pasa los desechos al segundo, pero no contiene las estructuras que vuelven a filtrar y descargan la orina. [7]

    Reproducción y ciclo de vida Editar

    Reproducción asexual Editar

    Los poliquetos pueden reproducirse asexualmente, dividiéndose en dos o más partes o brotando un nuevo individuo mientras el padre sigue siendo un organismo completo. [7] [35] Algunos oligoquetos, como Aulophorus furcatus, parecen reproducirse completamente asexualmente, mientras que otros se reproducen asexualmente en verano y sexualmente en otoño. La reproducción asexual en los oligoquetos siempre se realiza dividiendo en dos o más partes, en lugar de brotar. [11] [36] Sin embargo, nunca se ha visto a las sanguijuelas reproduciéndose asexualmente. [11] [37]

    La mayoría de los poliquetos y oligoquetos también utilizan mecanismos similares para regenerarse después de sufrir daños. Dos géneros de poliquetos, Chaetopterus y Dodecaceria, pueden regenerarse a partir de un solo segmento, y otros pueden regenerarse incluso si se les quita la cabeza. [11] [35] Los anélidos son los animales más complejos que pueden regenerarse después de un daño tan severo. [38] Por otro lado, las sanguijuelas no pueden regenerarse. [37]


    Investigación: ¿Puede estimar la altura de una persona a partir de la longitud de sus huesos?

    • Contribuido por Shannan Muskopf
    • Instructor de biología de secundaria en el distrito escolar de Granite City
    • Obtenido de Biology Corner

    En una zona de construcción cercana, los trabajadores han hecho un descubrimiento sorprendente. Descubrieron varios huesos que parecen haber sido enterrados hace algún tiempo. Formas parte de un equipo de antropólogos forenses que han sido llamados para analizar estos huesos. Desafortunadamente, los huesos resultaron gravemente dañados por el equipo de construcción. Todos los huesos se han mezclado y varios han sido aplastados. Sin embargo, cree que puede usar los huesos que quedan para determinar el número de cuerpos y la altura de cada individuo.

    Cuando se descubre un cuerpo, es importante aprender tanto como sea posible de los restos. Los antropólogos forenses usan fórmulas matemáticas para estimar la altura de una persona a partir de la longitud de ciertos huesos de su cuerpo.

    1. Con una regla o cinta métrica, mida la longitud de su fémur en centímetros. This is the large bone that runs from your hip socket to your knee cap. The bone that sticks out near your hip is part of the femur and is called the greater trochanter. Record this information in the table below for you and your lab partners. Gather data from at least three people in your class.

    *Use the femur length and the chart to calculate your height and compare that to your actual height. If your race isn't listed, you can find more formulas online.


    2. Next, measure the length of your tibia. Start at the the tibial tuberosity (bump on your shin) to the medial malleolus, the bump on your ankle. Use the chart to calculate your height based on the tibia.

    3. Finally, measure your ulna length by bending your arm and measuring from the proximal end of the ulna (elbow bump) to the distal end, the styloid process of the ulna. The styloid process is visible as a bump near your wrist. Use the chart to calculate your height based on the ulna.

    4. Complete the table for at least 3 members in your group or class.

    Nombre:
    Actual Height (cm)
    Femur Length (cm)
    Calculated Height (cm)
    Tibia Length (cm)
    Calculated Height (cm)
    Ulna Length (cm)
    Calculated Height (cm)

    Construction Site

    The following bones were recovered from the construction site. A fellow forensic anthropologist has already classified the bones by sex and race. Using the mathematical formulas, calculate the approximate height of each individual.

    Bone # Bone Type Length (cm) Raza Sexo Calculated Height (cm)
    1 Humerus 38.2 Caucasian Masculino
    2 Femur 44.0 African-American Mujer
    3 Ulna 25.4 Caucasian Masculino
    4 Femur 52.4 Caucasian Masculino
    5 Femur 43.9 African-American Mujer
    6 Tibia 45.7 Caucasian Masculino

    Discussion Questions:

    1. Is it possible that any of the bones came from the same person? Which bones do you think might be the same person and provide an explanation for WHY you think so.

    2. What is the minimum number of bodies buried at this site? What is the maximum number of bodies buried at this site? Explain your reasoning.

    3. Consider a case where two females have the same femur length. Would you expect those females to be the exact same height? ¿Por qué o por qué no?

    4. On the formula table, there is a symbol shown as ± . What does this symbol mean?

    5. Consider your calculated heights and your actual height. Are they within the range that was expected. Suggest a reason for why a person&rsquos calculated height might not be accurate.


    Measuring a Circle

    An easy way to estimate the value of pi is to divide a circle's circumference by its diameter. Measure the circumference of a cylinder or circle using a thin piece of string. (The circumference is the distance around the circle.)

    Try to match the edge of the circle to the string as best as you can the more closely your string matches the circle's circumference, the more accurate your measurement of pi will be. Mark or cut the string, and use a ruler to measure the string's length.

    Measure the diameter of the circle with your ruler. Make certain the ruler goes through the center of the circle, as a small error here can lead to a big error in the calculation.

    Divide the circumference you found in Step 1 by the diameter you found in Step 2. For example, if your circumference from Step 1 is 44 centimeters, and your diameter is 14 cm, then 44/14=3.14.


    How to calculate magnification of a cell- help!

    I know the equation to calculate magnification but I don't quite know how to substitute values, convert them etc. This is what I've done so far.

    Observed size= 40 micrometres
    Actual size= 60mm =60 000 micrometres
    40/60,000= 0.000666666 < that doesn't look right

    ¿No es lo que estás buscando? Try & hellip

    Magnification= size of image/ size of object = (40x 10^-6)/(60x10^-3)= 6.67x 10^-4

    I'm not sure whether it's right.

    Have you got observed and actual reversed?

    probably worth 1 out of 2 points for remebering to convert both into the same units anyway.

    (Publicación original de Sighrawr)
    I know the equation to calculate magnification but I don't quite know how to substitute values, convert them etc. This is what I've done so far.

    Observed size= 40 micrometres
    Actual size= 60mm =60 000 micrometres
    40/60,000= 0.000666666 < that doesn't look right

    are you sure you've not got the values mixed up, because a cell which is 60mm would be huge, so maybe you've got the observed size and actual sized mixed up.

    if not then your answer is correct, because the observed size is alot smaller than the actual size in this case.


    How to Calculate Percentage Increase

    This article was co-authored by Grace Imson, MA. Grace Imson is a math teacher with over 40 years of teaching experience. Grace is currently a math instructor at the City College of San Francisco and was previously in the Math Department at Saint Louis University. She has taught math at the elementary, middle, high school, and college levels. She has an MA in Education, specializing in Administration and Supervision from Saint Louis University.

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    Knowing how to calculate percentage increase is useful in a variety of situations. For instance, even when watching the news, you'll often hear a change described in large numbers without any percentage to give them context. If you calculate the percentage increase and discover it's actually less than 1%, you'll know not to believe the scare stories. Calculating percentage increase is as simple as dividing the size of the increase by the original amount.


    How Do You Calculate a Room's Maximum Occupancy?

    To calculate a room's maximum occupancy, determine factors such as the area of the room, the available space in the room, the number of useful exits and the height of the ceiling. Calculate a basic estimation of a room's maximum occupancy by dividing the available floor space in square feet by 36.

    Measure the width and length of the room in feet to calculate the area of the room. Multiply these two values to determine the area of the room in square feet.

    To calculate the approximate value of available floor space, find the approximate value of the space that's being obstructed by fixed structures, such as columns and pieces of furniture. Subtract this value from the area of the room to get an approximation of the floor space that is available for occupancy.

    Divide the available floor space by 36 to get an approximation of the maximum occupancy of the room. The number 36 comes from the notion that every person should be allotted a minimum space of 6 feet of length and width, which means that the recommended space that one person should have is equal to 36 square feet.


    How do you determine the length of an annelid? - biología

    Chloroplasts play a key role in the energy economy of the cells that harbor them. Chloroplasts are less well known than their mitochondrial counterparts, though they are usually much larger and have a key role in producing the reduced compounds that store energy which is then broken down in mitochondria. Chloroplasts have the pivotal role in the biosphere of carrying out the chemical transformations linking the inorganic world (CO2) to the organic world (carbohydrates). This feat of chemical transformation enables the long-term storage of the fleeting sun’s energy in carbohydrates and its controlled release in energy currencies such as ATP and NADPH. Those same carbon compounds also serve to build all the biomass of cells as a result of downstream metabolic transformations.

    Figure 1: Electron micrograph of a chloroplast. The light reactions occur in the membrane bound compartment called the thylakoid. There are usually about 40-60 stacks of disks termed grana per chloroplast (BNID 107013), covering 50-70% of the thylakoid membrane surface (BNID 107016). Each single stack has a diameter of 0.3-0.6 μm (BNID 107014). Sugar produced is stored in starch granules. (Adapted from B. Alberts et al, Mol. Biol. of the Cell, 4th ed., Figure 14-34, Garland science).

    Chloroplasts in vascular plants range from being football to lens shaped and as shown in Figure 1, have a characteristic diameter of ≈4-6 microns (BNID 104982, 107012), with a mean volume of ≈20 μm 3 (for corn seedling, BNID 106536). In algae they can also be cup-shaped, tubular or even form elaborate networks, paralleling the morphological diversity found in mitochondria. Though chloroplasts are many times larger than most bacteria, in their composition they can be much more homogenous, as required by their functional role which centers on carbon fixation. The interior of a chloroplast is made up of stacks of membranes, in some ways analogous to the membranes seen in the rod cells found in the visual systems of mammals. The many membranes that make up a chloroplast are fully packed with the apparatus of light capture, photosystems and related complexes. The rest of the organelle is packed almost fully with one dominant protein species, namely, Rubisco, the protein serving to fix CO2 in the carbon fixation cycle. The catalysis of this carbon-fixation reaction is relatively slow thus necessitating such high protein abundances.

    Figure 2: Chloroplasts in the moss Plagiomnium affine, found in old-growth boreal forests in North America, Europe and Asia, growing in moist woodland and turf. The shown lamina cells are elongated, with length of about 80 microns and width of 40 microns. These cells, as most plant cells, have their volume mostly occupied by large vacuoles so the cytoplasm and chloroplasts are at the periphery. Chloroplast also show avoidance movement, in which chloroplasts move from the cell surface to the side walls of cells under high light conditions to avoid photodamage. Used with permission from Ralf Wagner.
    From: http://www.dr-ralf-wagner.de/Moose/Plagiomnium_affine.html

    The number of chloroplasts per cell varies significantly between organisms and even within a given species can change significantly depending upon growth conditions. In the model algae


    How do you determine the length of an annelid? - biología

    Investigar
    Invertebrate Neurobiology
    Publications (htm) (pdf)
    Teaching
    Invertebrate Biology
    Neurobiology / Bioethics

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    Discovering and Investigating Paleozoic (Devonian) Microfossils [ NEW Hands-on inquiry with microfossils includes methods for collecting, isolating & handling. Presented at 2004 NABT & 2005 ABLE meetings [ M icrofossil images] [PowerPt- NABT]
    McWorm: Invertebrate Fast Food [Use Lumbriculus variegatus (blackworms) to study predation & feeding behaviors in Hidra [ hydra-A ] [ hydra-B ] Planaria, crayfish, Triops, leeches, ostracods & freshwater tropical fish. Co-author: K. Cain, 4 pp] [See predation at: http://www.kirkwood.cc.ia.us/faculty/bharvey/cbnmindex.htm Then, select: Species Interactions ] [COMMERCIAL KIT]
    Days of Our Spineless Lives < PDF-file > [Interdisciplinary, creative writing activity. Students write a first-person essay incorporating researched answers to more than 30 questions about biology & natural history of an invertebrate. Co-authored with L. Ihrig 12 pp]
    Americas Most Wanted Invertebrates < PDF-file > [Students integrate invertebrate biology content into a creative written/pictorial profile, resulting in a fugitive wanted poster. Activity parallels Days of Our Spineless Lives (above), co-authored with L. Ihrig10 pp]
    New Views of Daphnids NEW [Simple method to restrain daphnids underwater on a tether, allowing unimpaired movements of appendages & clear view of daphnid anatomy, physiology & behavior. Many possible investigations 4 pp] [See: daphnid swimming] [daphnid eye rotation]
    Low-Life Limericks [Invertebrate limericks NEW : hydra, tardigrade, centipede, millipede, planaria, brine shrimp, mite, leech, daphnid, freshwater jellyfish, snail, crayfish, spider, cockroach, & nematode illustrated 2 pp]
    Vinegar Eels [Hard-to-find biology background about Turbatrix aceti, the vinegar eel (Phylum Nematoda). Isolation methods & ideas for student inquiry 4 pp] INTERACTIVE ANIMATION of nematode swimming] [ computations for vinegar eel swimming ]
    Biological Smoke Detectors < pdf file > [Toxicology mini-manual, or primer, for students & teachers. Background info & ideas for using invertebrates for ecotoxicity testing. Ideas for student research & science fair projects. Kansas School Naturalist, vol. 50 (1)1-15, Dec., 2003 - multiple copies available on request ]
    Putting Your Best Root Forward: PORTFOLIO for a PLANT NEW [Assigned project in which students research & create an employment portfolio for a plant (= a showcase of ecological niche for a selected plant species).] NOTE: Plants are invertebrates, too! :-)

    For hard copy, specify article(s) & give complete mailing address (school or home). Enviar requests to:
    EMAIL: [email protected] PH: 515-294-8061 WEB: http://www.eeob.iastate.edu/faculty/DrewesC/htdocs/
    MAIL: Charles Drewes, EEOB Dept, Rm 503 Sci-II Bldg, Iowa State University, Ames, IA 50011 USA

    A Toolbox for Working With Living Invertebrates [Inexpensive materials & methods for collecting, handling & investigating living invertebrates. Excerpts from an article published in 26th Proceedings of Association for Biology Laboratory Education (ABLE).
    Microrulers [Make 10 microrulers for measuring small objects, under a dissecting scope, to the nearest 0.1 mm. Rulers are tiny, flexible & laminated. ]
    Pencil Pipet Technique [Simple, reliable way to transfer small invertebrates in small fluid volumes using stretched plastic pipet or capillary tube. Deliver tiny blackworm fragments to Hidra o Planaria to study prey capture & feeding 2 pp] [ stretch pipet ] NEW [suck up microfossils]
    The Handy-Dandy FleX-Acto Invertebrate Detachment Tool [Simple tool for lab/field [ FleX-Acto tool ] Rapid, safe removal of invertebrates from rock, wood, glass surfaces. Detach planaria , hydra, NEW leech cocoon, snail egg mass , snails & caddisfly larvae, 2 pp]
    Pour-Person Plankton Net [Cheap way to collect & concentrate zooplankton in lab or field. 2 pp] [ photo of net ]
    Mini-Widgets [Simple, creature-friendly tools [ widgets ] for manipulating small, living invertebrates, such as molluscs, annelids, small crustaceans, insects, bryozoa, etc. Use instead of metal dissecting probes or toothpicks. 1p] NEW [pick up dry microfossils]
    Making Flexible Foam Well Slides [Make simple, unbreakable, re-usable, non-seeping well slides from acetate sheets, foam tape, or foam sheets great for viewing small aquatic invertebrates with compound or dissecting microscope 2 pp] [ Foam slide ]
    Tape Well Slides [Easy-to-make, unbreakable, leak-proof, clear-bottomed, well-slides with customizable well dimensions. Excellent for viewing aquatic oligochaetes, planaria, rotifers, pond water, etc.]
    Many-view Mini-box [A 15-cent, reusable, leak-proof, small viewbox (= plastic spectrophotometric cuvet) with soft rubber cork [ minibox ] view living planaria, hydra, snails, zooplankton, small leeches, insects from all sides with stereo or compound scope 2 pp]
    Agua < pdf file > [Compares desirable & undesirable sources of water for maintenance/culture of invertebrates 1 p]
    Food for Aquatic Invertebrates [ Updated Food for brine shrimp, freshwater snails, freshwater oligochaetes, etc 2 pp]
    New Light on Phototaxis and Phototropism [Make & use ultra-bright LEDs for phototaxis inquiry in invertebrates & phototropism in plants [ phototropism ]. Write-up has photobiology background, practical ideas, references, commercial sources/catalog numbers for components, circuit designs for battery/AC power.11 pp] NEW inquire [red-LED probe] [blue-LED probe] Phototaxis: [daphnids] [ostracods]
    Auxiliary LED Illuminator System for Brock Microscopes NEW [ View-1 View-2 , View-3 .] Inquire
    ILLUM-11 high-brightness, low-heat microscope illuminator NEW [ILLUM-11 photo] Inquire
    Portascope [Portable low-power microscope. Ultra-bright LED provides sub-stage or above-stage lighting. Portascope w/canister LED Portascope with built-in LED: front view & side view] Inquire
    Biological Smoke Detectors < pdf file > [A toxicology mini-manual, or primer, for students or teachers. Background info & ideas for using invertebrates (e.g., Lumbriculus or earthworms) for ecotoxicity testing in student research or science fair projects. Kansas School Naturalist, vol 50:1-15, Dec, 2003 - multiple copies available on request ] [web version w/no figures].

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    Those Wonderful Worms (Lumbriculus variegatus) [Illustrated article Carolina Tips, Aug., 1996, vol. 59, no. 3, 4 pp].
    Lumbriculus variegatus: Commercial Sources NEW [List of sources for Lumbriculus variegatus (aquatic oligochaete) 1 p]
    Culturing Lumbriculus variegatus < PDF file > [Brief explanation for culturing Lumbriculus in the lab, 1 p]
    Lumbriculus variegatus: A Biology Profile [Background about taxonomy, lifestyle, reproduction, muscle, circulation & behavior of blackworms (Lumbriculus) - not found in general or advanced texts 4 pp]
    Lumbriculus variegatus photos [ Habitat For Wormanity-A ] [ Habitat for Wormanity-B ] [ worm-1 ] [ worm-2 ] [ worm-3 ] [ worm anatomy ][Cross-sections]
    Biology Facts about Mudworms < PDF file > [Brief summary of Lumbriculus (blackworm) biology 1 p]
    As the Worm Turns [Investigate Lumbriculus crawling, swimming & reversal behavior Soy. Biol. Maestro, 61:438-442) INTERACTIVE ANIMATIONS: [Lumbriculus swimming] , [oligochaete crawling] [Lumbriculus body reversal] [ helical swimming computations ]
    Heads or Tails NEW > Regeneration lab writeup [Detailed exercise on head & tail regeneration in Lumbriculus published in Proc.Assoc.for Biology Lab. Educ. (ABLE), Vol. 17, 1996 pp. 23-34. (pdf file) ] [ Regenerated fragment ] [ R egeneration animation]
    Blackworms, Blood Vessel Pulsation and Drug Effects (pdf file) [Student lab exercise on pulse rate & drug effects in Lumbriculus dorsal blood vessel Soy. Biol. Maestro, 61:48-53. [View of dorsal & lateral blood vessels] See INTERACTIVE ANIMATIONS of pulsations: [mid-body pulse rate] [posterior pulse rate] [pulse velocity] NEW: [Worms in tape-well slides] NEW: [Calculate blood volume through dorsal vessel]
    Non-invasive Recording of Giant Nerve Fiber Action Potentials from Freely Moving Oligochaetes [Record all-or-none spikes from giant nerve fibers in intact Lumbriculus Proc Assoc Biol Lab Educ (ABLE), 20:45-62, 1999. worm AP-1 worm AP-2 ] [Oligochaete Giant Axons -PowerPt slides]
    Functional Organization of the Nervous System in Lumbriculus variegatus < pdf file > [Background information about Lumbriculus nervous system - not in general or advanced texts 4 pp] [Cross-sections]
    Worm Limericks < PDF file > [Lumbriculus poesía 1 p]
    Biological Smoke Detectors < pdf file > [Toxicology mini-manual, or primer, for students or teachers. Background info & ideas for using invertebrates (e.g., Lumbriculus or earthworms) for ecotoxicity testing in student research or science fair projects. Kansas School Naturalist, vol. 50 (1)1-15, Dec., 2003 - multiple copies available on request ]
    Through a Looking Glass - Version I [Inquiry-based lab utilizing worms tendencies to crawl into capillary tubes (thigmotaxis, gving clear views of internal/external features & functions in Lumbriculus, 8 pp co-author: B. Grosz] NEW [worms in tubes] [ worm anatomy ]
    Through a Looking Glass - Version II < pdf file > [Inquiry-based lab exercise. View internal & external features of whole worms, Lumbriculus, or worm fragments, using flat-tipped culture tubes. 2 pp]
    McWorm: Invertebrate Fast Food [Use Lumbriculus variegatus (blackworms) to study predatory attack & feeding behavior in Hidra [ hydra-A ] [ hydra-B ] Planaria , crayfish, Triops, leeches & freshwater tropical fish. Co-author: K. Cain. 4 pp] [COMMERCIAL KIT]
    Papyrus terrestris [Build 24-inch-long model of oligochaete worm that shows biomechanics of peristaltic locomotion in oligochaete worms, including circular & longitudinal muscle actions, plus protraction & retraction of chaetae 1 p] [see oligochaete crawling]

    ABLE-2003 : D ownloadable PowerPt files show freeze-frame images of invertebrate locomotion. Use with Invertebrate LocOlympics lab writeup (NOTE: Files vary from 500-1100 kB) SELECT >>


    Ver el vídeo: LOS ANÉLIDOS. Animales invertebrados. Vídeos educativos para niños (Noviembre 2022).